| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 前言 | 第11-14页 |
| 研究现况与成果 | 第11-12页 |
| 研究目的与方法 | 第12-14页 |
| 第一章 实验仪器和材料 | 第14-20页 |
| 1.1 主要实验试剂 | 第14-15页 |
| 1.2 主要实验仪器 | 第15-16页 |
| 1.3 实验所用溶液的配制 | 第16-20页 |
| 第二章 基于3D生物打印技术构建含细胞微结构仿生模型 | 第20-27页 |
| 2.1 材料与方法 | 第20-23页 |
| 2.1.1 小鼠表皮干细胞的分离与培养 | 第20-21页 |
| 2.1.2 野生型C57BL/6小鼠足趾部真皮基质匀浆(PD)的提取 | 第21页 |
| 2.1.3 3D生物打印墨水的制备与保存 | 第21页 |
| 2.1.4 构建三种不同构架的3D微结构仿生模型 | 第21-22页 |
| 2.1.5 流变学参数检测 | 第22页 |
| 2.1.6 统计学分析 | 第22-23页 |
| 2.2 结果 | 第23-25页 |
| 2.2.1 3D微结构仿生模型的特征 | 第24页 |
| 2.2.2 微结构的机械参数分析 | 第24-25页 |
| 2.3 讨论 | 第25-26页 |
| 2.4 小结 | 第26-27页 |
| 第三章 3D微结构仿生模型中小鼠表皮干细胞活性的变化 | 第27-33页 |
| 3.1 材料与方法 | 第27-28页 |
| 3.1.1 活/死细胞活性染色技术的应用 | 第27页 |
| 3.1.2 定量计数各个不同观察时间点的细胞活性 | 第27-28页 |
| 3.1.3 统计学分析 | 第28页 |
| 3.2 结果 | 第28-30页 |
| 3.2.1 不同观察时间点上各组细胞活性的变化 | 第28-29页 |
| 3.2.2 细胞活性与剪切应力的关系 | 第29-30页 |
| 3.3 讨论 | 第30-32页 |
| 3.4 小结 | 第32-33页 |
| 第四章 3D微结构仿生模型中细胞聚集成团与细胞增殖 | 第33-40页 |
| 4.1 材料与方法 | 第33-34页 |
| 4.1.1 荧光显微镜用于连续性观察 | 第33页 |
| 4.1.2 病理冰冻切片与苏木素-伊红染色(HE染色) | 第33-34页 |
| 4.1.3 统计学分析 | 第34页 |
| 4.2 结果 | 第34-37页 |
| 4.2.1 不同观察时间点上细胞聚集成团的情况 | 第36-37页 |
| 4.2.2 光镜观察结果与HE染色结果的一致性和差异性 | 第37页 |
| 4.2.3 细胞聚集成团和细胞增殖与剪切应力的关系 | 第37页 |
| 4.3 讨论 | 第37-39页 |
| 4.4 小结 | 第39-40页 |
| 第五章 3D微结构仿生模型中小鼠表皮干细胞定向分化为汗腺细胞 | 第40-46页 |
| 5.1 材料与方法 | 第40页 |
| 5.1.1 病理冰冻切片技术 | 第40页 |
| 5.1.2 免疫荧光染色检测各组分化时间点 | 第40页 |
| 5.1.3 统计学分析 | 第40页 |
| 5.2 结果 | 第40-43页 |
| 5.2.1 小鼠表皮干细胞在3D微结构中的起始分化时间点 | 第40-41页 |
| 5.2.2 分化进程与剪切应力的关系 | 第41-43页 |
| 5.3 讨论 | 第43-44页 |
| 5.4 小结 | 第44-46页 |
| 结论 | 第46-48页 |
| 参考文献 | 第48-51页 |
| 附录 | 第51-52页 |
| 综述 3D生物打印技术的进展 | 第52-60页 |
| 综述参考文献 | 第57-60页 |
| 致谢 | 第60-62页 |
