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鸭乙型肝炎病毒preS/S-C融合基因DNA疫苗的构建及其体液免疫应答的初步研究

中文摘要第3-5页
Abstract第5-7页
缩略词表第8-13页
第一部分 文献综述第13-20页
    第一章 鸭乙型肝炎病毒DNA疫苗的研究进展第13-20页
        1. DNA疫苗的概述第13-14页
        2. DHBV表面抗原DNA疫苗的研究第14-16页
            2.1 表面抗原的功能研究第14-15页
            2.2 表面抗原基因疫苗的研究第15-16页
        3. DHBV核心抗原DNA疫苗的研究第16-17页
            3.1 核心抗原的功能研究第16-17页
            3.2 核心抗原基因疫苗的研究第17页
        4. 融合基因DNA疫苗的研究现状第17-18页
        5. 展望第18-19页
        6. 研究目的及意义第19-20页
第二部分 试验研究第20-73页
    第二章 鸭乙型肝炎病毒的全基因克隆与序列分析第20-32页
        1. 试验材料第20-21页
            1.1 实验动物、毒株与菌种第20页
            1.2 主要试剂及其配制第20-21页
            1.3 主要仪器第21页
        2. 试验方法第21-26页
            2.1 DNA提取第21页
            2.2 引物设计第21-22页
            2.3 PCR检测第22页
            2.4 DHBV的分离第22页
            2.5 DHBV全长基因的T克隆第22-25页
                2.5.1 PCR扩增与回收第22-23页
                2.5.2 目的基因的连接与转化第23-24页
                2.5.3 菌落PCR鉴定第24-25页
                2.5.4 测序第25页
            2.6 DHBV全长基因的序列分析第25-26页
        3. 结果第26-30页
            3.1 PCR检测血清中DHBV第26页
            3.2 DHBV全长基因的扩增、克隆与测序第26-28页
            3.3 DHBV全基因序列分析第28-30页
                3.3.1 基因组结构分析第28页
                3.3.2 核苷酸与氨基酸相似性分析第28-29页
                3.3.3 遗传进化分析第29-30页
        4. 讨论第30-31页
        5. 小结第31-32页
    第三章 DHBV preS基因的克隆表达及其多克隆抗体的制备第32-49页
        1. 试验材料第32-35页
            1.1 毒株、菌种及实验动物第32页
            1.2 主要试剂及其配制第32-35页
                1.2.1 诱导表达相关试剂的配制第33页
                1.2.2 SDS-PAGE电泳相关溶液的配制第33-34页
                1.2.3 Western blot相关溶液的配制第34页
                1.2.4 蛋白纯化相关溶液的配制第34页
                1.2.5 电洗脱相关溶液的配制第34页
                1.2.6 间接ELISA相关溶液的配制第34-35页
            1.3 主要仪器第35页
        2. 试验方法第35-41页
            2.1 DHBV preS/S基因的生物信息学分析第35页
            2.2 原核表达质粒pET32a(+)-preS的构建第35-37页
                2.2.1 引物设计第35-36页
                2.2.2 目的基因的PCR扩增与回收第36页
                2.2.3 原核表达质粒的提取第36页
                2.2.4 目的片段的酶切与连接第36-37页
                2.2.5 重组质粒的转化与鉴定第37页
                2.2.6 测序第37页
            2.3 原核表达质粒的诱导表达第37-39页
                2.3.1 原核表达质粒的转化与鉴定第37-38页
                2.3.2 原核表达质粒的诱导表达第38页
                2.3.3 SDS-PAGE分析第38-39页
                2.3.4 Western blot分析第39页
                2.3.5 可溶性分析第39页
            2.4 重组蛋白表达条件的优化第39-40页
                2.4.1 IPTG浓度优化第39页
                2.4.2 诱导时间优化第39-40页
            2.5 重组蛋白的大量诱导表达与纯化第40页
            2.6 蛋白浓度的测定第40页
            2.7 鼠抗-preS高免血清的制备第40-41页
                2.7.1 免疫小鼠第40-41页
                2.7.2 血清效价的测定第41页
        3. 结果第41-47页
            3.1 DHBV preS/S基因序列分析第41-43页
                3.1.1 preS/S蛋白的氨基酸组成分析第41-42页
                3.1.2 preS/S蛋白跨膜区与信号肽预测第42-43页
                3.1.3 preS/S蛋白抗原表位预测第43页
            3.2 DHBV preS基因的扩增第43页
            3.3 重组原核表达质粒的鉴定第43-44页
            3.4 重组preS蛋白的SDS-PAGE分析第44页
            3.5 重组preS蛋白的Western blot分析第44-46页
            3.6 重组preS蛋白的纯化第46-47页
            3.7 鼠抗-preS高免血清的效价检测第47页
        4. 讨论第47-48页
        5. 小结第48-49页
    第四章 DHBV preS/S-C融合基因DNA疫苗的构建及其表达第49-59页
        1. 试验材料第49-50页
            1.1 毒株、菌种与细胞第49页
            1.2 主要试剂及其配制第49-50页
            1.3 主要仪器第50页
        2. 试验方法第50-54页
            2.1 引物设计第50页
            2.2 目的基因的PCR扩增与回收第50-51页
            2.3 目的基因的T克隆第51页
            2.4 pVAX1-preS/S、pVAX1-C和pVAX1-preS/S-C的构建第51-52页
                2.4.1 提取质粒第51页
                2.4.2 酶切与连接第51-52页
                2.4.3 重组质粒的转化与鉴定第52页
            2.5 转染第52-54页
                2.5.1 提取质粒第52页
                2.5.2 COS 7细胞复苏与培养第52-53页
                2.5.3 细胞转染第53-54页
            2.6 Western Blot检测重组质粒的表达产物第54页
        3. 结果第54-57页
            3.1 preS/S、C与preS/S-C基因的PCR扩增第54页
            3.2 T克隆质粒的鉴定第54-55页
            3.3 真核表达质粒的鉴定第55页
            3.4 Western blot检测重组质粒的表达产物第55-57页
        4. 讨论第57-58页
        5. 小结第58-59页
    第五章 DHBV preS/S-C融合基因DNA疫苗的免疫原性研究第59-73页
        1. 试验材料第59-60页
            1.1 实验动物、菌种与血清第59页
            1.2 主要试剂及其配制第59-60页
                1.2.1 包涵体蛋白纯化相关溶液的配制第59-60页
            1.3 主要仪器第60页
        2. 试验方法第60-63页
            2.1 提取质粒第60页
            2.2 免疫动物第60-61页
                2.2.1 免疫动物分组第60-61页
                2.2.2 样品采集第61页
            2.3 纯化抗原第61页
            2.4 抗原浓度测定第61页
            2.5 间接ELISA方法的建立第61-63页
                2.5.1 最佳抗原包被浓度和血清稀释度的选择第61-62页
                2.5.2 最佳酶标抗体工作浓度的测定第62页
                2.5.3 阴阳临界值的确定第62页
                2.5.4 特异性试验第62页
                2.5.5 敏感性试验第62页
                2.5.6 重复性试验第62-63页
            2.6 间接ELISA方法的应用第63页
        3. 结果第63-71页
            3.1 重组C-SN蛋白的SDS-PAGE分析第63-64页
            3.2 间接ELISA的最佳工作条件和判定标准第64-68页
                3.2.1 重组蛋白preS与C-SN的包被浓度与血清稀释度的确定第64-65页
                3.2.2 酶标二抗稀释度的确定第65-66页
                3.2.3 阴、阳性血清临界值的确定第66页
                3.2.4 特异性试验第66-67页
                3.2.5 敏感性试验第67-68页
                3.2.6 重复性试验第68页
            3.3 间接ELISA检测鸭血清中抗preS蛋白的抗体第68-69页
            3.4 间接ELISA检测鸭血清中抗C蛋白的抗体第69-71页
        4. 讨论第71-72页
        5. 小结第72-73页
参考文献第73-81页
致谢第81-82页
作者简介第82页
攻读硕士学位期间完成的学术论文第82页

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