摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-9页 |
缩写表 | 第9-13页 |
1 前言 | 第13-25页 |
·增强 UV-B 辐射对植物的影响 | 第13-15页 |
·增强 UV-B 辐射在植物生长发育方面的影响 | 第13-14页 |
·增强 UV-B 辐射对植物蛋白质代谢及生理生化的影响 | 第14-15页 |
·增强 UV-B 辐射对植物遗传物质及 DNA 损伤的影响 | 第15页 |
·He-Ne 激光对植物的生物学效应及应用 | 第15-17页 |
·激光的类型及生物学作用机理 | 第15-16页 |
·He-Ne 激光在植物生长发育方面的影响 | 第16页 |
·He-Ne 激光对植物蛋白质代谢及生理生化的影响 | 第16页 |
·He-Ne 激光对植物遗传物质的影响 | 第16-17页 |
·激光技术的应用 | 第17页 |
·植物微管结合蛋白研究进展 | 第17-22页 |
·微管的基本特征 | 第17-18页 |
·微管结合蛋白 | 第18-19页 |
·植物微管结合蛋白的研究进展 | 第19-22页 |
·本研究的意义和主要内容 | 第22-25页 |
2 材料与方法 | 第25-31页 |
·材料 | 第25页 |
·材料培养 | 第25页 |
·处理设置 | 第25页 |
·UV-B 辐照 | 第25页 |
·He-Ne 激光辐照 | 第25页 |
·微管结合蛋白 MAP65s 的提取 | 第25-26页 |
·SDS-PAGE 对 MAP65s 的检测 | 第26页 |
·Western-Blot 对 MAP65 的鉴定 | 第26-27页 |
·MAP65s 含量的测定 | 第27页 |
·绘制标准曲线 | 第27页 |
·MAP65s 含量的测定 | 第27页 |
·MAP65s 体外与微管的关系 | 第27-28页 |
·微管蛋白自聚合为单根微管实验 | 第28页 |
·MAP65s 与微管的共沉淀实验 | 第28页 |
·MAP65s 与微管的浊度法实验 | 第28页 |
·免疫荧光标记 | 第28-29页 |
·小麦根尖细胞内 MAP65s 的荧光标记 | 第28页 |
·小麦根尖细胞内染色体的荧光标记 | 第28-29页 |
·图像观察及数据处理 | 第29-31页 |
3 结果与分析 | 第31-49页 |
·小麦幼苗微管结合蛋白 MAP65s 的鉴定 | 第31-33页 |
·MAP65s 的 SDS-PAGE 电泳分析 | 第31-32页 |
·MAP65 的 Western-Blot 鉴定 | 第32-33页 |
·不同日龄小麦幼苗中 MAP65s 含量的变化 | 第33-34页 |
·小麦幼苗叶片微管蛋白和 MAP65s 含量的比较 | 第34-35页 |
·MAP65s 体外对微管聚合的影响 | 第35-38页 |
·微管蛋白自聚合为单根微管 | 第35-36页 |
·MAP65s 与微管的结构关系 | 第36-37页 |
·MAP65s 与微管的动态关系 | 第37-38页 |
·He-Ne 激光和增强 UV-B 辐射对小麦幼苗微管结合蛋白 MAP65s 的影响 | 第38-43页 |
·标准曲线绘制 | 第38-39页 |
·对小麦叶片 MAP65s 含量的影响 | 第39-41页 |
·对小麦根中 MAP65s 含量的影响 | 第41-43页 |
·MAP65s 体内与染色体的分布关系 | 第43-49页 |
·小麦根尖分裂期细胞中 MAP65s 与染色体的分布 | 第43-46页 |
·增强 UV-B 辐射对小麦根中 MAP65s 和染色体分布的影响 | 第46-49页 |
4 讨论 | 第49-55页 |
·微管结合蛋白 MAP65s 体外对微管聚合的影响 | 第49-50页 |
·He-Ne 激光和增强 UV-B 辐射对小麦幼苗微管结合蛋白 MAP65s 的影响 | 第50-51页 |
·间接免疫荧光标记 | 第51-52页 |
·微管结合蛋白 MAP65s 与“分束分裂” | 第52-55页 |
5 结论 | 第55-57页 |
致谢 | 第57-59页 |
参考文献 | 第59-69页 |
附录 | 第69页 |