| 中文摘要 | 第1-11页 |
| Abstract | 第11-14页 |
| 缩略词表 | 第14-15页 |
| 绪论 | 第15-23页 |
| 1 水稻纹枯病研究进展 | 第15-21页 |
| ·水稻纹枯病的病理学研究和病害循环 | 第16-17页 |
| ·水稻抗纹枯病研究进展 | 第17-21页 |
| ·纹枯病菌接种方法和抗性评价标准研究进展 | 第17-19页 |
| ·水稻纹枯病菌接种方法 | 第17-19页 |
| ·水稻抗纹枯病抗性评价标准 | 第19页 |
| ·水稻抗纹枯病种质资源研究进展 | 第19-20页 |
| ·水稻纹枯病抗性相关QTL研究进展 | 第20-21页 |
| ·转基因育种抗纹枯病研究进展 | 第21页 |
| 2 本研究的目的和意义 | 第21-23页 |
| 第一章 水稻OsPGIP基因家族的表达谱分析和功能研究 | 第23-90页 |
| 1 前言 | 第23-30页 |
| ·植物多聚半乳糖醛酸酶抑制蛋白(polygalacturonases inhibiting proteins,PGIP)研究进展 | 第23-30页 |
| ·植物多聚半乳糖醛酸酶(polygalacturonase,PG) | 第24-25页 |
| ·植物PGIP基因的发现和早期研究 | 第25-26页 |
| ·植物PGIP基因的生物学特性和功能 | 第26-28页 |
| ·植物PGIP基因的表达模式 | 第28-29页 |
| ·植物PGIP基因对各种生物和非生物胁迫的应答反应 | 第29页 |
| ·植物PGIP基因在转基因育种中的应用 | 第29-30页 |
| ·植物PGIP基因研究的展望 | 第30页 |
| 2 研究的目的与意义 | 第30-31页 |
| 3 材料与方法 | 第31-53页 |
| ·水稻材料 | 第31页 |
| ·菌株和载体 | 第31页 |
| ·水稻OsPGIP基因家族生物信息学分析 | 第31-32页 |
| ·不同物种中PGIP基因家族序列保守性分析 | 第32页 |
| ·水稻OsPGIP基因家族全生育期表达谱分析 | 第32-33页 |
| ·水稻OsPGIP基因家族对不同激素和病原菌处理的响应 | 第33页 |
| ·对不同处理下样品的real-time PCR分析 | 第33-34页 |
| ·水稻OsPGIP基因家族启动子区域不同顺式元件的分析 | 第34页 |
| ·数据处理方法 | 第34-35页 |
| ·OsPGIP基因超表达载体构建 | 第35-36页 |
| ·OsPGIP基因全长片段的获取 | 第35-36页 |
| ·OsPGIP基因超表达载体的构建 | 第36页 |
| ·OsPGIP基因的原核表达 | 第36-37页 |
| ·OsPGIP基因原核表达载体的构建 | 第36页 |
| ·OsPGIP基因的原核表达和产物检测 | 第36-37页 |
| ·OsPGIP基因的亚细胞定位分析 | 第37-42页 |
| ·OsPGIP基因亚细胞定位载体的构建 | 第37-39页 |
| ·利用洋葱表皮细胞进行OsPGIP基因的亚细胞定位分析 | 第39-40页 |
| ·分离水稻原生质体进行OsPGIP基因的亚细胞定位分析 | 第40-42页 |
| ·水稻愈伤组织农杆菌介导的遗传转化 | 第42页 |
| ·OsPGIP基因超表达转基因植株的PCR检测 | 第42-43页 |
| ·水稻植株DNA小量提取 | 第42-43页 |
| ·OsPGIP基因超表达转基因植株的PCR检测 | 第43页 |
| ·OsPGIP基因超表达转基因植株的拷贝数检测和表达量检测 | 第43-47页 |
| ·水稻植株基因组DNA大量提取 | 第43-44页 |
| ·OsPGIP基因超表达转基因植株的拷贝数检测 | 第44-46页 |
| ·水稻植株总RNA提取 | 第46页 |
| ·OsPGIP基因超表达转基因植株的表达量检测 | 第46-47页 |
| ·OsPGIP基因超表达转基因纯合阳性和阴性株系的筛选 | 第47-48页 |
| ·OsPGIP基因超表达转基因植株的抗性鉴定 | 第48-53页 |
| ·OsPGIP基因超表达转基因植株的抗性鉴定方法 | 第48-50页 |
| ·大田带菌牙签接种纹枯病菌法田间小区种植设计 | 第50-51页 |
| ·大田带菌牙签接种纹枯病菌法病级调查方法和抗性评价指标 | 第51-53页 |
| ·OsPGIP基因超表达转基因植株的农艺性状考查 | 第53页 |
| 4 实验结果与分析 | 第53-83页 |
| ·水稻中新OsPGIP基因的发现和基本信息分析 | 第53-56页 |
| ·不同物种中PGIP基因家族进化树分析 | 第56-58页 |
| ·MH63中OsPGIP基因家族成员在不同组织和器官的表达谱分析 | 第58-60页 |
| ·MH63三叶一心期幼苗中OsPGIP基因家族对激素处理的表达谱分析 | 第60-63页 |
| ·ZH11三叶一心期幼苗中OsPGIP基因家族对激素处理的表达谱分析 | 第63-66页 |
| ·ZH11孕穗期植株中OsPGIP基因家族对纹枯病菌接种处理的响应 | 第66-67页 |
| ·水稻中OsPGIP基因家族成员启动子区潜在顺式元件的分析 | 第67-69页 |
| ·OsPGIP基因超表达转基因植株的PCR阳性检测 | 第69页 |
| ·OsPGIP基因超表达转基因阳性植株的拷贝数检测 | 第69-70页 |
| ·OsPGIP基因超表达转基因单拷贝植株的表达量检测 | 第70-71页 |
| ·OsPGIP基因超表达转基因植株纯合阳性和阴性株系的筛选 | 第71页 |
| ·OsPGIP基因超表达转基因植株的纹枯病抗性鉴定 | 第71-78页 |
| ·OsPGIP基因超表达转基因植株利用生化培养箱离体叶片接种法纹枯病抗性鉴定结果 | 第71-73页 |
| ·OsPGIP基因超表达转基因植株利用小苗期温室带菌稻谷接种法纹枯病抗性鉴定结果 | 第73-74页 |
| ·OsPGIP基因超表达转基因植株利用大田带菌牙签接种纹枯病菌法纹枯病抗性鉴定结果 | 第74-78页 |
| ·OsPGIP基因超表达转基因纯合株系的农艺性状考查 | 第78-81页 |
| ·OsPGIP基因的亚细胞定位 | 第81-82页 |
| ·OsPGIP基因蛋白的原核表达 | 第82-83页 |
| 5 讨论 | 第83-90页 |
| ·水稻中新的OsPGIP基因的发现及判定标准 | 第83-84页 |
| ·单子叶和双子叶植物中PGIP蛋白的差异 | 第84-85页 |
| ·植物中PGIP基因的表达模式具有多样性 | 第85-86页 |
| ·植物中PGIP基因对多种激素处理具有不同的响应 | 第86-87页 |
| ·植物中PGIP基因的表达可以被病原菌诱导和调节 | 第87-88页 |
| ·OsPGIP基因启动子区域顺式元件可以部分解释OsPGIP基因的不同表达模式 | 第88-89页 |
| ·水稻OsPGIP1基因有望运用于水稻抗纹枯病转基因育种 | 第89-90页 |
| 第二章 将有效霉素A生物合成途径转入水稻培育抗纹枯病转基因水稻 | 第90-113页 |
| 1 前言 | 第90-94页 |
| ·有效霉素A的发现、作用机理和在农业生产上的应用 | 第90-91页 |
| ·吸水链霉菌中有效霉素A生物合成途径研究进展 | 第91-94页 |
| 2 研究的目的和意义 | 第94页 |
| 3 材料与方法 | 第94-101页 |
| ·水稻材料 | 第94页 |
| ·菌株和载体 | 第94-95页 |
| ·val基因超表达载体构建 | 第95-96页 |
| ·val基因全长片段的获取 | 第95-96页 |
| ·val基因超表达载体的构建 | 第96页 |
| ·水稻愈伤组织农杆菌介导的遗传转化 | 第96-97页 |
| ·超表达val转基因植株的PCR检测 | 第97-98页 |
| ·水稻植株DNA小量提取 | 第97页 |
| ·转基因植株的PCR检测 | 第97-98页 |
| ·超表达val转基因植株的拷贝数检测和表达量检测 | 第98-99页 |
| ·水稻植株基因组DNA大量提取 | 第98页 |
| ·超表达val转基因植株的拷贝数检测 | 第98页 |
| ·水稻植株总RNA提取 | 第98-99页 |
| ·超表达val转基因植株的表达量检测 | 第99页 |
| ·转基因植株杂交聚合8个基因 | 第99页 |
| ·8基因聚合阳性植株中val基因的表达量检测 | 第99-100页 |
| ·8基因聚合阳性植株中有效霉素A的抽提和含量检测 | 第100-101页 |
| ·有效霉素A体外抑制纹枯病菌生长的有效浓度实验 | 第101页 |
| 4 实验结果与分析 | 第101-110页 |
| ·超表达val转基因植株PCR阳性检测 | 第101-102页 |
| ·超表达val转基因阳性植株的拷贝检测 | 第102-104页 |
| ·超表达val单拷贝转基因植株的表达量检测 | 第104-105页 |
| ·8基因聚合植株的获得 | 第105-106页 |
| ·8基因聚合阳性植株中val基因的表达量检测 | 第106-108页 |
| ·8基因聚合阳性植株中有效霉素的含量检测 | 第108页 |
| ·有效霉素A体外抑制纹枯病菌生长实验 | 第108-110页 |
| 5 讨论 | 第110-113页 |
| ·有效霉素A生物合成途径转入水稻植株中遇到的问题以及可能的解决办法 | 第110-111页 |
| ·将有效霉素A生物合成途径转入水稻植株开展后续工作的计划 | 第111-113页 |
| 参考文献 | 第113-130页 |
| 作者简介 | 第130-131页 |
| 致谢 | 第131-132页 |
