| 中文摘要 | 第1-10页 |
| 英文摘要（Abstract） | 第10-13页 |
| 第一部分 绪 论 | 第13-44页 |
| 文献综述 | 第13-35页 |
| 1、 关于用于心血管医疗的聚合物生物材料 | 第13-17页 |
| 2、 关于聚合物生物材料的表面构建与生物反应行为 | 第17-22页 |
| 3、 关于聚合物生物材料表面的凝血及抗凝血涂层改性 | 第22-27页 |
| 4、 关于聚合物生物材料表面的内皮细胞组织工程化改性 | 第27-31页 |
| 5、 关于可用作生物材料的接枝/嵌段共聚物表面研究 | 第31-35页 |
| 课题的提出 | 第35-36页 |
| 参考文献 | 第36-44页 |
| 第二部分 聚氧乙烯偶联物表面改性剂的制备与聚氨酯改性表面的构建 | 第44-91页 |
| 课题的提出与基本研究思路及方案设计 | 第44-48页 |
| 第一章 聚氧乙烯偶联物表面改性剂的制备与表征 | 第48-56页 |
| 1．1 SPEO的制备与表征 | 第48-52页 |
| 1．1．1 实验部分 | 第48-49页 |
| 1．1．2 SPEO产物表征 | 第49-52页 |
| 1．2 聚氧乙烯偶联物的制备与表征 | 第52-55页 |
| 1．2．1 实验部分 | 第52页 |
| 1．2．2 MSPEO、MPEO产物表征 | 第52-55页 |
| 1．3 本章小结 | 第55-56页 |
| 第二章 低含量聚氯乙烯偶联物共混聚醚氨酯表面体系的构建与分析 | 第56-78页 |
| 2．1 聚氧乙烯偶联物共混聚醚氨酯表面体系的构建 | 第56-59页 |
| 2．1．1 共混膜的制备 | 第56-58页 |
| 2．1．2 共混组分分析 | 第58页 |
| 2．1．3 共混膜空气相及模拟水相界面的获得 | 第58-59页 |
| 2．2 共混膜的表面改性研究 | 第59-68页 |
| 2．2．1 ATR-FT-IR用于共混膜表面半定量分析方法 | 第59-60页 |
| 2．2．2 表面层共混组分间氢键作用 | 第60-62页 |
| 2．2．3 表面改性的实现与表面分析 | 第62-66页 |
| 2．2．4 改性表面的稳定性 | 第66-68页 |
| 2．3 含不同PEO链长的PEU-MSPEO共混膜的表面改性研究 | 第68-76页 |
| 2．3．1 ATR-FTIR分析 | 第68-71页 |
| 2．3．2 XPS分析 | 第71-75页 |
| 2．3．3 接触角分析 | 第75-76页 |
| 2．4 本章小结 | 第76-78页 |
| 第三章 聚氧乙烯偶联物改性剂用于聚氨酯基材的表面涂层体系研究 | 第78-87页 |
| 3．1 以PEU为成膜剂的MSPEO表面涂层改性研究 | 第78-83页 |
| 3．1．1 以PEU为成膜剂的MSPEO涂层表面的获得 | 第79-80页 |
| 3．1．2 以PEU为成膜剂的MSPEO涂层表面的表面分析 | 第80-83页 |
| 3．2 以壳聚糖为成膜剂的MSPEO表面涂层改性研究 | 第83-86页 |
| 3．2．1 以壳聚糖为成膜剂的MSPEO涂层表面的获得 | 第83-85页 |
| 3．2．2 以壳聚糖为成膜剂的MSPEO涂层表面的表面分析 | 第85-86页 |
| 3．3 本章小结 | 第86-87页 |
| 第二部分主要结论 | 第87-89页 |
| 参考文献 | 第89-91页 |
| 第三部分 聚氧乙烯偶联物表面改性剂的动物体内组织相容性（毒性）研究 | 第91-105页 |
| 课题的提出与基本研究思路及方案设计 | 第91-92页 |
| 第四章 聚氧乙烯偶联物的动物体内毒性测试 | 第92-100页 |
| 4．1 MSPEO的体内急性毒性（LD_（50））试验 | 第92-93页 |
| 4．1．1 MSPEO的急性毒性试验 | 第92页 |
| 4．1．2 鼠对MSPEO的最大耐受性试验 | 第92-93页 |
| 4．1．3 MSPEO的急性毒性结论 | 第93页 |
| 4．2 MSPEO的准慢性体内安全性测试 | 第93-100页 |
| 4．2．1 测试方法 | 第97-98页 |
| 4．2．2 测试结果 | 第98-100页 |
| 4．2．3 测试结论 | 第100页 |
| 第三部分主要结论 | 第100-104页 |
| 参考文献 | 第104-105页 |
| 第四部分 聚氧乙烯偶联物改性聚氨酯表面的蛋白质吸附与血液相容性研究 | 第105-157页 |
| 课题的提出与基本研究思路及方案设计 | 第105-110页 |
| 第五章 聚氧乙烯偶联物改性表面的血清蛋白质吸附研究 | 第110-139页 |
| 5．1 PEU-cibaMSPEO改性表面的制备与表征 | 第110-115页 |
| 5．1．1 实验部分 | 第110-112页 |
| 5．1．2 产物表征 | 第112-115页 |
| 5．2 ATR-FTIR法用于改性表面BSA吸附的定量分析 | 第115-124页 |
| 5．2．1 实验部分 | 第115-117页 |
| 5．2．2 ATR-FT-IR法表征蛋白质吸附的定量方法 | 第117-120页 |
| 5．2．3 ATR-FT-IR法表征白蛋白吸附的结果与讨论 | 第120-124页 |
| 5．3 放射性~（125）I示踪法分析改性表面的蛋白质吸附行为 | 第124-134页 |
| 5．3．1 实验部分 | 第124-127页 |
| 5．3．2 蛋白质吸附的定量测试结果与讨论 | 第127-134页 |
| 5．4 本章小结 | 第134-136页 |
| 附： 放射性~（125）I示踪法蛋白质表面吸附的定量测试数据表 | 第136-139页 |
| 第六章 聚氧乙烯偶联物改性表面的血液相容性研究 | 第139-154页 |
| 6．1 改性表面的体外静态血液相容性测试 | 第140-148页 |
| 6．1．1 实验部分 | 第140-143页 |
| 6．1．2 体外静态血液相容性测试的结果与讨论 | 第143-148页 |
| 6．2 改性表面的体外动态血液相容性测试 | 第148-153页 |
| 6．2．1 实验部分 | 第148-149页 |
| 6．2．2 改性表面体外动态血液相容性测试的结果与分析 | 第149-153页 |
| 6．3 本章小结 | 第153-154页 |
| 第四部分主要结论 | 第154-155页 |
| 参考文献 | 第155-157页 |
| 第五部分 聚氧乙烯偶联物改性聚氨酯表面的内皮细胞相容性研究 | 第157-206页 |
| 课题的提出与基本研究思路及方案设计 | 第157-160页 |
| 第七章 氨基酸类细胞活性因子的表面固定 | 第160-175页 |
| 7．1 以氨基酸类细胞活性因子为端基的MPEO改性剂的合成 | 第160-165页 |
| 7．1．1 实验部分 | 第160-162页 |
| 7．1．2 产物表征 | 第162-165页 |
| 7．2 固定氨基酸、多肽或蛋白质的PEU改性表面的构建 | 第165-174页 |
| 7．2．1 AA、RGD及蛋白质-MPEO改性PEU表面的构建 | 第165-166页 |
| 7．2．2 AA、RGD及蛋白质-MPEO改性PEU材料的表面表征 | 第166-174页 |
| 7．3 本章小结 | 第174-175页 |
| 第八章 聚氧乙烯偶联物改性表面的内皮细胞相容性研究 | 第175-202页 |
| 8．1 内皮细胞培养与细胞相容性表征方法 | 第176-179页 |
| 8．1．1 原料与试剂准备 | 第176-177页 |
| 8．1．2 内皮细胞的培养方法 | 第177-178页 |
| 8．1．3 细胞相容性表征方法 | 第178-179页 |
| 8．2 共混法改性PEU表面的内皮细胞相容性研究 | 第179-197页 |
| 8．2．1 不同种类氨基酸端基对内皮细胞相容性的影响 | 第179-188页 |
| 8．2．2 不同链长PEO桥联对内皮细胞相容性的影响 | 第188-193页 |
| 8．2．3 RGD端基改性剂改性PEU表面的内皮细胞相容性与RGD序列氨基酸功能的比较 | 第193-195页 |
| 8．2．4 共混法改性PEU表面的内皮细胞相容性综合讨论 | 第195-197页 |
| 8．3 原位表面反应法固定RGD及蛋白质的PEU表面的内皮细胞相容性研究 | 第197-201页 |
| 8．4 本章小结 | 第201-202页 |
| 第五部分主要结论 | 第202-204页 |
| 参考文献 | 第204-206页 |
| 第六部分 全文结论 | 第206-212页 |
| 全文主要结论 | 第206-209页 |
| 特色与创新 | 第209-210页 |
| 问题与展望 | 第210-212页 |
| 作者简介（Resume） | 第212-214页 |
| 致 谢（Acknowledgement） | 第214页 |
