| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-13页 |
| 0 前言 | 第13-33页 |
| ·胞外多糖简介 | 第13-17页 |
| ·胞外多糖的生理功能 | 第13-14页 |
| ·胞外多糖的生物学活性 | 第14页 |
| ·海洋细菌胞外多糖 | 第14页 |
| ·胞外多糖的合成类型 | 第14-15页 |
| ·影响EPS 产量的因素 | 第15-16页 |
| ·胞外多糖开发与应用现状 | 第16-17页 |
| ·寡糖 | 第17-21页 |
| ·寡糖的分类 | 第17页 |
| ·功能性寡糖的生理功能 | 第17-18页 |
| ·寡糖的提取和制备 | 第18-19页 |
| ·寡糖的分离 | 第19-20页 |
| ·寡糖的结构分析方法 | 第20-21页 |
| ·噬菌体及其聚糖酶 | 第21-26页 |
| ·噬菌体简介 | 第21-23页 |
| ·海洋环境中的噬菌体 | 第23页 |
| ·噬菌体聚糖酶 | 第23-26页 |
| ·本课题研究内容、目的及意义 | 第26-28页 |
| 参考文献 | 第28-33页 |
| 1 克雷伯氏菌胞外多糖液体发酵条件优化 | 第33-46页 |
| ·实验材料 | 第33-34页 |
| ·实验菌株 | 第33页 |
| ·实验试剂 | 第33-34页 |
| ·实验仪器 | 第34页 |
| ·实验方法 | 第34-38页 |
| ·培养基 | 第34页 |
| ·种子培养液的制备方法 | 第34-35页 |
| ·发酵条件的研究 | 第35页 |
| ·发酵液中残糖量测定方法 | 第35-36页 |
| ·EPS 产量的测定方法 | 第36页 |
| ·培养基的选择和优化 | 第36-38页 |
| ·结果与分析 | 第38-44页 |
| ·最佳培养条件的选择 | 第38-40页 |
| ·培养基最佳成分的选择 | 第40-42页 |
| ·正交试验优化培养基组分和培养条件 | 第42-43页 |
| ·Klebsiella K13 胞外多糖发酵过程曲线 | 第43-44页 |
| ·验证试验 | 第44页 |
| ·本章小结 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-46页 |
| 2 噬菌体聚糖酶的制备及研究 | 第46-57页 |
| ·材料与仪器 | 第46-47页 |
| ·试验菌株 | 第46页 |
| ·试验试剂 | 第46-47页 |
| ·试验仪器 | 第47页 |
| ·方法 | 第47-49页 |
| ·试剂及培养基配制 | 第47页 |
| ·噬菌体P13 的富集培养 | 第47-48页 |
| ·噬菌体P13 的效价测定 | 第48页 |
| ·噬菌体聚糖酶酶活测定 | 第48页 |
| ·噬菌体聚糖酶粗酶液的制备 | 第48页 |
| ·噬菌体聚糖酶的提取 | 第48-49页 |
| ·噬菌体聚糖酶的超滤离心 | 第49页 |
| ·噬菌体聚糖酶的Q-Sepharose FF 凝胶柱层析纯化 | 第49页 |
| ·结果与分析 | 第49-56页 |
| ·噬菌体P13 的富集及效价测定 | 第49-50页 |
| ·噬菌体P13 侵染过程中各参数变化曲线 | 第50-52页 |
| ·噬菌体聚糖酶的提取 | 第52-53页 |
| ·噬菌体聚糖酶的纯化 | 第53-56页 |
| ·本章小结 | 第56页 |
| 参考文献 | 第56-57页 |
| 3 噬菌体聚糖酶酶解产物的制备及结构分析 | 第57-80页 |
| ·材料与仪器 | 第57-58页 |
| ·试验材料 | 第57页 |
| ·试验试剂 | 第57-58页 |
| ·试验仪器 | 第58页 |
| ·试验方法 | 第58-61页 |
| ·酶解产物的制备 | 第58-59页 |
| ·寡糖的分离纯化 | 第59页 |
| ·寡糖结构测定 | 第59-61页 |
| ·结果与分析 | 第61-74页 |
| ·寡糖的Bio-Gel P4 柱分离纯化 | 第61-62页 |
| ·寡糖的Bio-Gel P6 柱纯化 | 第62-63页 |
| ·胞外多糖的单糖组分分析 | 第63-64页 |
| ·寡糖的红外光谱分析 | 第64-65页 |
| ·寡糖分子量的测定 | 第65-67页 |
| ·寡糖的一维核磁共振波谱分析 | 第67-72页 |
| ·寡糖的二维核磁共振波谱分析 | 第72-74页 |
| ·本章小结 | 第74-79页 |
| 参考文献 | 第79-80页 |
| 4. 论文结论 | 第80-82页 |
| 5. 创新点 | 第82页 |
| 6. 展望 | 第82-83页 |
| 致谢 | 第83页 |
| 个人简历 | 第83页 |
| 发表的学术论文 | 第83页 |