农杆菌介导的MADS-box基因转化黄瓜初步研究
| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-10页 |
| 缩略语 | 第10-14页 |
| 一 综述 | 第14-34页 |
| ·黄瓜的生物特性 | 第14-15页 |
| ·植物遗传转化方法 | 第15-19页 |
| ·农杆菌介导法 | 第16-18页 |
| ·基因枪介导法 | 第18页 |
| ·花粉管通道法 | 第18-19页 |
| ·植物遗传转化研究进展 | 第19-28页 |
| ·转基因作物在全球的种植 | 第19-20页 |
| ·主要作物遗传转化研究进展 | 第20-23页 |
| ·大豆遗传转化研究进展 | 第20-21页 |
| ·玉米遗传转化研究进展 | 第21-22页 |
| ·水稻遗传转化研究进展 | 第22-23页 |
| ·葫芦科作物遗传转化研究进展 | 第23-28页 |
| ·黄瓜遗传转化研究进展 | 第23-26页 |
| ·其它葫芦科作物遗传转化研究进展 | 第26-28页 |
| ·MADS-box基因研究进展 | 第28-32页 |
| ·花器官形态发生与MADS-box基因的发现 | 第28-29页 |
| ·MADS-box基因的类型及其结构 | 第29-30页 |
| ·经典的ABC模型 | 第30-31页 |
| ·MADS-box基因的功能 | 第31-32页 |
| ·黄瓜花发育中MADS-box基因的研究 | 第32-33页 |
| ·黄瓜花的结构特点 | 第32页 |
| ·黄瓜花器官同源异型基因克隆 | 第32-33页 |
| ·本研究的目的意义 | 第33-34页 |
| 二 材料方法 | 第34-47页 |
| ·材料 | 第34-36页 |
| ·植物材料 | 第34页 |
| ·质粒 | 第34-36页 |
| ·农杆菌株系 | 第36页 |
| ·主要仪器 | 第36-37页 |
| ·方法 | 第37-47页 |
| ·农杆菌感受态细胞的制备 | 第38页 |
| ·电激转化 | 第38-39页 |
| ·质粒的提取 | 第39-40页 |
| ·菌株活化及工程菌液的制备 | 第40页 |
| ·烟草的遗传转化 | 第40-43页 |
| ·烟草转化体系 | 第40-41页 |
| ·烟草DNA的提取(CTAB法) | 第41-42页 |
| ·转化烟草的PCR检测 | 第42-43页 |
| ·转化烟草的GFP荧光检测 | 第43页 |
| ·黄瓜的遗传转化 | 第43-47页 |
| ·诱导培养基中植物生长调节剂的筛选 | 第43-44页 |
| ·除草剂选择压浓度的筛选 | 第44-45页 |
| ·黄瓜转化体系的建立 | 第45-46页 |
| ·转化黄瓜的PCR检测 | 第46-47页 |
| 三 结果与分析 | 第47-65页 |
| ·CSMADS06 基因编码蛋白质的序列比对 | 第47-50页 |
| ·构建质粒的检测 | 第50-54页 |
| ·质粒的PCR检测 | 第50页 |
| ·转化烟草的PCR检测 | 第50-52页 |
| ·转化烟草的GFP荧光检测 | 第52-54页 |
| ·黄瓜转化体系的建立 | 第54-62页 |
| ·黄瓜诱导培养基的筛选 | 第54-55页 |
| ·除草剂选择压的筛选 | 第55-59页 |
| ·选择培养除草剂浓度的筛选 | 第55-57页 |
| ·生根培养除草剂浓度的筛选 | 第57-59页 |
| ·转化黄瓜的再生过程 | 第59-62页 |
| ·黄瓜转化植株的PCR检测 | 第62-64页 |
| ·DNA提取 | 第62页 |
| ·黄瓜转化植株的PCR检测 | 第62-64页 |
| ·T_0代植株的性状表现 | 第64-65页 |
| 四 讨论 | 第65-69页 |
| ·除草剂选择压浓度的筛选 | 第65-66页 |
| ·基因型对转化的影响 | 第66-67页 |
| ·外植体的选择对转化的影响 | 第67-68页 |
| ·CSMADS06 基因的功能推测 | 第68页 |
| ·材料污染对转化的影响 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-82页 |
| 附录 | 第82-85页 |
| 1. MS 基本培养基 | 第82-83页 |
| 2. 烟草转化培养基 | 第83页 |
| 3. 黄瓜转化培养基 | 第83页 |
| 4. LB 培养基 | 第83-84页 |
| 5. 几种激素和抗生素浓度及配制方法 | 第84-85页 |
| 致谢 | 第85-86页 |
| 攻读硕士学位期间发表或录用的文章 | 第86-88页 |
