| 缩略词一览表 | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 引言 | 第12-13页 |
| 1.材料与方法 | 第13-21页 |
| 1.1 实验动物 | 第13页 |
| 1.2 实验细胞 | 第13-14页 |
| 1.3 主要试剂 | 第14-15页 |
| 1.4 主要仪器设备 | 第15-16页 |
| 1.5 实验方法 | 第16-20页 |
| 1.5.1 牛膝和杜仲的质量评价 | 第16-17页 |
| 1.5.1.1 中药的配制 | 第16页 |
| 1.5.1.2 样品溶液的配制 | 第16页 |
| 1.5.1.3 对照品溶液的配制 | 第16页 |
| 1.5.1.4 色谱条件 | 第16-17页 |
| 1.5.2 牛膝-杜仲干预斑马鱼GIOP模型的体内实验 | 第17-19页 |
| 1.5.2.1 地塞米松诱导制作GIOP斑马鱼模型与评估 | 第17页 |
| 1.5.2.2 牛膝-杜仲药对配伍干预斑马鱼GIOP模型毒性实验 | 第17-18页 |
| 1.5.2.3 均匀设计实验筛选牛膝-杜仲的最佳配伍比例 | 第18-19页 |
| 1.5.3 牛膝-杜仲干预GIOP骨细胞病理模型作用的体外实验 | 第19-20页 |
| 1.5.3.1 牛膝和杜仲给药浓度及作用时间的评估 | 第19页 |
| 1.5.3.2 阳性对照药物阿仑膦酸钠给药浓度的评估 | 第19页 |
| 1.5.3.3 CCK-8法检测牛膝-杜仲配伍组合对GIOP病理骨细胞模型增殖的作用 | 第19页 |
| 1.5.3.4 AnnexinV-PI法检测牛膝-杜仲配伍组合对GIOP病理骨细胞模型凋亡的影响 | 第19-20页 |
| 1.6 统计分析方法 | 第20-21页 |
| 2.实验结果 | 第21-37页 |
| 2.1 牛膝和杜仲的质量评价 | 第21-24页 |
| 2.2 牛膝-杜仲干预斑马鱼GIOP模型的体内实验 | 第24-32页 |
| 2.2.1 确立地塞米松诱导制作斑马鱼GIOP模型 | 第24-25页 |
| 2.2.2 牛膝-杜仲药对配伍干预斑马鱼GIOP模型毒性实验 | 第25-28页 |
| 2.2.3 均匀设计实验筛选牛膝-杜仲的最佳配伍比例 | 第28-32页 |
| 2.2.3.1 均匀设计实验 | 第28-31页 |
| 2.2.3.2 验证性实验 | 第31-32页 |
| 2.3 牛膝-杜仲干预GIOP骨细胞病理模型作用的体外实验 | 第32-37页 |
| 2.3.1 确定牛膝和杜仲干预GIOP骨细胞病理模型给药浓度及作用时间 | 第32-33页 |
| 2.3.2 确定阳性对照药物阿仑膦酸钠干预GIOP骨细胞病理模型给药浓度及作用时间 | 第33-34页 |
| 2.3.3 牛膝-杜仲配伍组合提高GIOP骨细胞病理模型的细胞增殖能力 | 第34-35页 |
| 2.3.4 牛膝-杜仲配伍组合降低GIOP骨细胞病理模型的细胞总坏死率 | 第35-37页 |
| 3.分析与讨论 | 第37-49页 |
| 3.1 现代医学对GIOP的认识 | 第37-38页 |
| 3.2 中医学对GIOP的认识 | 第38页 |
| 3.3 牛膝-杜仲药对相须配伍,补肝肾、强筋骨 | 第38-39页 |
| 3.4 GC引起骨细胞产生自噬及凋亡的作用机制 | 第39-44页 |
| 3.4.1 GC与骨细胞信号传递途径 | 第39-42页 |
| 3.4.1.1 Wnt/β-catenin信号通路 | 第40-41页 |
| 3.4.1.2 RANKL/RANK/OPG信号通路 | 第41-42页 |
| 3.4.2 GC引起骨细胞凋亡的机制 | 第42页 |
| 3.4.3 GC引起骨细胞自噬的机制 | 第42-44页 |
| 3.5 中药血清与中药冻干粉 | 第44-45页 |
| 3.6 斑马鱼建立GIOP模型的优势 | 第45-46页 |
| 3.7 均匀设计的特点 | 第46-47页 |
| 3.8 结果讨论 | 第47-49页 |
| 结论 | 第49-50页 |
| 致谢 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-60页 |
| 附录 | 第60-73页 |
| 附录一 :文献综述 热量限制延缓衰老的自噬与表观遗传修饰交互关系 | 第60-72页 |
| 参考文献 | 第69-72页 |
| 附录二 :在读期间发表学术论文 | 第72-73页 |
| 附录三 :在读期间参加学术会议及获奖情况 | 第73页 |
