| 摘要 | 第1-16页 |
| ABSTRACT | 第16-20页 |
| 缩略语表 | 第20-21页 |
| 第一章 绪论 | 第21-35页 |
| 1 肝损伤 | 第21-26页 |
| ·肝脏 | 第21页 |
| ·肝损伤的机制 | 第21-23页 |
| ·肝细胞损伤的化学机制 | 第21-23页 |
| ·质膜的损害 | 第21-22页 |
| ·氧自由基(Oxygen free radicals，OFR)的损害 | 第22页 |
| ·肝细胞钙超载 | 第22-23页 |
| ·肝细胞损伤的免疫学机制 | 第23页 |
| ·细胞因子(Cytokine) | 第23页 |
| ·一氧化氮(Nitric oxide，NO) | 第23页 |
| ·肝细胞凋亡(HepatoC3Gte apoptosis) | 第23页 |
| ·化学性肝损伤模型 | 第23-24页 |
| ·CCl_4肝损伤模型 | 第24页 |
| ·酒精性肝损伤模型发病机制 | 第24页 |
| ·抗肝细胞损伤药物 | 第24-26页 |
| ·抗病毒药物 | 第24-25页 |
| ·干扰素 | 第25页 |
| ·膦甲酸钠(Trisodium phosphonoformate，PFA) | 第25页 |
| ·免疫调节药物 | 第25页 |
| ·转移因子 | 第25页 |
| ·胸腺素a1(Thymosin-a1) | 第25页 |
| ·白细胞介素-2(interleukin-2) | 第25页 |
| ·中草药 | 第25-26页 |
| ·小柴胡汤 | 第25-26页 |
| ·水飞蓟素 | 第26页 |
| ·改善肝功能药物 | 第26页 |
| ·联苯双酯 | 第26页 |
| ·Ca~(2+)通道阻滞剂 | 第26页 |
| ·NO抑制剂 | 第26页 |
| ·抗氧自由基药物 | 第26页 |
| 2 天然抗氧化剂-花色苷类化合物的研究 | 第26-31页 |
| ·花色苷类物质的结构、种类及性质 | 第27-28页 |
| ·花色苷类化合物的提取分离 | 第28-29页 |
| ·花色苷类物质抗氧化作用 | 第29-30页 |
| ·花色苷类物质对肝损伤的保护作用研究进展 | 第30-31页 |
| 3 天然抗氧化资源-黑米的研究进展 | 第31-33页 |
| ·黑米种质资源 | 第31页 |
| ·黑米的功能特性及其相关研究 | 第31-33页 |
| ·抗氧化作用 | 第31-32页 |
| ·与抗氧化有关的其他生理活性 | 第32-33页 |
| ·对心血管的保护作用 | 第32页 |
| ·抗癌作用 | 第32-33页 |
| ·其他 | 第33页 |
| 4 研究目的、意义 | 第33-34页 |
| 5 研究主要内容 | 第34-35页 |
| 第二章 BRA的分离纯化及其成分鉴定 | 第35-50页 |
| 1 材料与方法 | 第35-40页 |
| ·仪器设备 | 第35页 |
| ·材料 | 第35-36页 |
| ·试验方法 | 第36-40页 |
| ·CBRA的制备 | 第36页 |
| ·花色苷的定量 | 第36页 |
| ·最佳树脂类型的筛选 | 第36-37页 |
| ·树脂预处理 | 第36页 |
| ·树脂吸附率和解吸率的测定 | 第36-37页 |
| ·AB-8对CBRA静态吸附性能研究 | 第37页 |
| ·CBRA在 AB-8上吸附平衡时间的测定 | 第37页 |
| ·CBRA溶液pH值对吸附效果的影响 | 第37页 |
| ·洗脱剂(乙醇)浓度对解吸效果的影响 | 第37页 |
| ·大孔吸附树脂动态吸附性能研究 | 第37-38页 |
| ·样品浓度对吸附效果的影响 | 第37页 |
| ·吸附流速对吸附效果的影响 | 第37页 |
| ·泄漏曲线的测定 | 第37-38页 |
| ·解吸流速对 AB-8大孔树脂解吸效果的影响及洗脱曲线的测定 | 第38页 |
| ·AB-8型大孔树脂重复使用次数对吸附效果的影响 | 第38页 |
| ·大孔树脂 AB-8对 CBRA的纯化 | 第38页 |
| ·BRA定性检验 | 第38-39页 |
| ·盐酸—镁粉反应 | 第38页 |
| ·中性醋酸铅反应 | 第38页 |
| ·FeCl_3显色反应 | 第38页 |
| ·莫立许反应 | 第38-39页 |
| ·碘液反应 | 第39页 |
| ·花色苷总抗氧化能力的测定 | 第39页 |
| ·BRA的主成分鉴定 | 第39-40页 |
| ·色谱条件的选择(Liu X M et al.，2004) | 第39页 |
| ·标准品溶液的制备及线性关系考察 | 第39-40页 |
| ·精密度试验 | 第40页 |
| ·样品提取物中花色苷成分及含量的测定 | 第40页 |
| 2 结果与分析 | 第40-48页 |
| ·5种大孔树脂的吸附效果比较 | 第40页 |
| ·AB-8对 CBRA的静态吸附性能 | 第40-42页 |
| ·吸附平衡时间 | 第40-41页 |
| ·CBRA溶液pH值 | 第41页 |
| ·洗脱剂(乙醇)浓度 | 第41-42页 |
| ·AB-8对 CBRA的动态吸附性能 | 第42-44页 |
| ·样品浓度 | 第42-43页 |
| ·吸附流速 | 第43页 |
| ·泄漏曲线 | 第43-44页 |
| ·解吸流速 | 第44页 |
| ·AB-8大孔树脂重复使用次数对吸附效果的影响 | 第44-45页 |
| ·AB-8大孔树脂对 BRA的吸附纯化效果 | 第45-46页 |
| ·BRA定性检验 | 第45-46页 |
| ·盐酸—镁粉反应 | 第45页 |
| ·中性醋酸铅反应 | 第45页 |
| ·FeCl_3显色反应 | 第45页 |
| ·莫立许反应 | 第45-46页 |
| ·碘液反应 | 第46页 |
| ·BRA纯化前后抗氧化能力比较 | 第46页 |
| ·BRA主成分鉴定 | 第46-48页 |
| ·标准品溶液的制备及线性关系考察 | 第46-47页 |
| ·精密度试验 | 第47页 |
| ·样品提取物纯化前后花色苷成分及含量的测定 | 第47-48页 |
| 3 讨论 | 第48-50页 |
| ·黑米花色苷的分离纯化工艺 | 第48页 |
| ·黑米中花色苷主要种类及含量 | 第48-50页 |
| 第三章 BRA对 CCL_4亚急性小鼠肝损伤的保护和抗氧化作用研究 | 第50-62页 |
| 1 材料与方法 | 第50-54页 |
| ·材料 | 第50-51页 |
| ·试剂及仪器 | 第50-51页 |
| ·BRA制备 | 第51页 |
| ·动物与分组 | 第51页 |
| ·动物饲养及处理 | 第51页 |
| ·检测指标及方法 | 第51-54页 |
| ·肝组织匀浆液的制备与蛋白质含量测定 | 第51页 |
| ·血清 ALT、AST、SOD活性及 MDA、8-OHdG含量测定 | 第51-53页 |
| ·ALT、AST的测定 | 第52页 |
| ·血清 SOD活力的测定 | 第52页 |
| ·MDA的测定 | 第52-53页 |
| ·肝脏 TAC、SOD、GSH-Px活性及 MDA、GSH含量测定 | 第53页 |
| ·肝脏总抗氧化能力T-AOC的测定 | 第53页 |
| ·肝组织 SOD活力的测定 | 第53页 |
| ·肝组织 GSH-Px活性的测定 | 第53页 |
| ·肝组织 MDA含量的测定 | 第53页 |
| ·肝组织 GSH含量的测定 | 第53页 |
| ·组织病理学形态观察 | 第53-54页 |
| ·数据处理和统计分析 | 第54页 |
| 2 结果与分析 | 第54-59页 |
| ·小鼠一般情况 | 第54-55页 |
| ·BRA对小鼠血清 ALT、AST水平的影响 | 第55-57页 |
| ·BRA对小鼠肝组织形态学变化的影响 | 第57页 |
| ·BRA对小鼠血清氧化应激水平的影响 | 第57-58页 |
| ·BRA对小鼠肝组织氧化应激水平的影响 | 第58-59页 |
| 3 讨论 | 第59-62页 |
| ·BRA对小鼠血清肝酶水平和肝组织病理形态学的影响 | 第60页 |
| ·BRA对小鼠氧化应激水平的影响 | 第60-62页 |
| 第四章 BRA体外清除自由基抗氧化活性研究 | 第62-70页 |
| 1 材料与方法 | 第62-63页 |
| ·实验材料和仪器设备 | 第62-63页 |
| ·实验材料 | 第62页 |
| ·试剂 | 第62页 |
| ·仪器及设备 | 第62-63页 |
| ·实验方法 | 第63页 |
| ·各样品溶液的制备 | 第63页 |
| ·普鲁土蓝法测定还原能力 | 第63页 |
| ·铁离子还原法测定总抗氧化能力 | 第63页 |
| ·花色苷清除 DPPH·自由基实验 | 第63页 |
| 2 结果与分析 | 第63-66页 |
| ·还原能力 | 第63-64页 |
| ·总抗氧化能力 | 第64-66页 |
| ·BRA纯化前后总抗氧化能力 | 第64页 |
| ·3种花色苷单体总抗氧化能力 | 第64-66页 |
| ·DPPH自由基清除能力 | 第66页 |
| ·BRA纯化前后清除自由基能力 | 第66页 |
| ·3种花色苷单体清除自由基能力 | 第66页 |
| 3 讨论 | 第66-70页 |
| ·BRA体外抗氧化作用 | 第67页 |
| ·种单体抗氧化差异 | 第67-70页 |
| 第五章 BRA对 CCL_4损伤 L-02肝细胞的保护及氧化应激的影响 | 第70-94页 |
| 1 材料与方法 | 第70-75页 |
| ·主要仪器 | 第70页 |
| ·主要试剂及其配制 | 第70-71页 |
| ·主要试剂 | 第70-71页 |
| ·主要试剂的配制 | 第71页 |
| ·细胞株 | 第71-72页 |
| ·细胞的传代 | 第71-72页 |
| ·细胞的冻存 | 第72页 |
| ·细胞的复苏 | 第72页 |
| ·细胞活力检测 | 第72页 |
| ·体外实验 | 第72-75页 |
| ·细胞培养 | 第72页 |
| ·CCl_4处理 L-02肝细胞损伤模型的建立 | 第72-73页 |
| ·细胞分组及处理 | 第72-73页 |
| ·CCl_4处理时间及浓度对细胞活力的影响 | 第73页 |
| ·CCl_4处理时间及浓度对细胞肝酶活性的影响 | 第73页 |
| ·CCl_4处理时间及浓度对细胞氧化还原体系 MDA含量的影响 | 第73页 |
| ·BRA对 CCl_4损伤 L-02肝细胞的保护及氧化应激的影响 | 第73-75页 |
| ·细胞分组及处理 | 第73-74页 |
| ·细胞活力 | 第74页 |
| ·肝酶活性 | 第74页 |
| ·细胞氧化-抗氧化酶活性和细胞 MDA、NO含量 | 第74页 |
| ·肝酶活性的测定 | 第74页 |
| ·细胞氧化-抗氧化酶活性和细胞 MDA、NO含量的测定 | 第74-75页 |
| ·3种花色苷单体对 CCl_4损伤 L-02肝细胞的保护及氧化应激的影响 | 第75页 |
| ·细胞分组及处理 | 第75页 |
| ·细胞活力 | 第75页 |
| ·肝酶活性 | 第75页 |
| ·细胞氧化-抗氧化酶活性和细胞 MDA、NO含量 | 第75页 |
| ·统计分析 | 第75页 |
| 2 结果与分析 | 第75-88页 |
| ·肝细胞的一般生长状态 | 第75-77页 |
| ·CCl_4体外肝细胞损伤模型的建立 | 第77-79页 |
| ·CCl_4处理时间及浓度对细胞活力的影响 | 第77页 |
| ·CCl_4处理时间及浓度对细胞培养上清中肝酶活性的影响 | 第77-79页 |
| ·CCl_4处理时间及浓度对 ALT释出的影响 | 第77-79页 |
| ·CCl_4处理时间及浓度对 AST活性的影响 | 第79页 |
| ·CCl_4处理时间及浓度对细胞细胞氧化还原体系 MDA含量的影响 | 第79页 |
| ·BRA对 CCl_4损伤 L-02肝细胞的保护及氧化应激的影响 | 第79-81页 |
| ·细胞活力 | 第79页 |
| ·细胞肝酶活性 | 第79页 |
| ·细胞 MDA、NO含量 | 第79-80页 |
| ·细胞抗氧化水平 | 第80-81页 |
| ·花色苷单体对 CCl_4损伤 L-02肝细胞的保护及氧化应激的影响 | 第81-85页 |
| ·细胞活力 | 第81页 |
| ·细胞肝酶活性 | 第81-82页 |
| ·细胞 MDA和NO含量 | 第82-83页 |
| ·细胞抗氧化水平 | 第83-85页 |
| ·3种单体对肝损伤细胞的保护和抗氧化作用比较 | 第85-88页 |
| ·细胞活力 | 第85-86页 |
| ·细胞肝酶活性 | 第86页 |
| ·细胞 MDA和NO含量 | 第86-87页 |
| ·细胞抗氧化水平 | 第87-88页 |
| 3 讨论 | 第88-94页 |
| ·肝细胞 CCl_4损伤模型的建立 | 第89页 |
| ·BRA对细胞 L-02存活率的提高作用 | 第89-90页 |
| ·BRA对肝细胞抗氧化防御系统的影响 | 第90-92页 |
| ·对脂质过氧化产物 MDA产生的抑制作用 | 第90-91页 |
| ·BRA对抗氧化物活性的提高作用 | 第91-92页 |
| ·BRA对细胞膜完整性的保护作用 | 第92页 |
| ·BRA对 NO产生的抑制作用 | 第92-94页 |
| 第六章 结论 | 第94-98页 |
| 主要结论 | 第94-97页 |
| 创新点 | 第97页 |
| 展望 | 第97-98页 |
| 参考文献 | 第98-104页 |
| 致谢 | 第104-105页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第105页 |
