| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 缩写符号对照表 | 第10-11页 |
| 第1章绪论 | 第11-22页 |
| 1.1肿瘤标志物概述 | 第11-12页 |
| 1.2肿瘤标志物的检测方法 | 第12-15页 |
| 1.2.1化学发光免疫分析 | 第12-13页 |
| 1.2.2酶联免疫吸附实验 | 第13-14页 |
| 1.2.3免疫传感器 | 第14-15页 |
| 1.3肿瘤标志物的检测信号 | 第15-17页 |
| 1.4目标信号放大策略 | 第17-20页 |
| 1.5背景信号降低策略 | 第20页 |
| 1.6本论文的研究内容及意义 | 第20-22页 |
| 第2章基于荧光素的光诱导氧化酶活性比色检测ALP和AFP | 第22-36页 |
| 2.1引言 | 第22-23页 |
| 2.2实验部分 | 第23-26页 |
| 2.2.1试剂与仪器 | 第23-25页 |
| 2.2.2缓冲溶液和抗体溶液的配制 | 第25页 |
| 2.2.3ALP活性的检测 | 第25页 |
| 2.2.4AFP活性测定 | 第25页 |
| 2.2.5临床血清样本的获取与处理 | 第25-26页 |
| 2.3结果与讨论 | 第26-34页 |
| 2.3.1比色检测ALP的可行性 | 第26页 |
| 2.3.2反应条件优化 | 第26-28页 |
| 2.3.3ALP的检测性能 | 第28-30页 |
| 2.3.4ALP检测的选择性 | 第30-31页 |
| 2.3.5比色免疫检测AFP的分析性能 | 第31-33页 |
| 2.3.6人血清样品中AFP的测定 | 第33-34页 |
| 2.4结论 | 第34-36页 |
| 第3章基于双锁策略减少背景信号高灵敏检测ALP和AFP | 第36-50页 |
| 3.1引言 | 第36-37页 |
| 3.2实验部分 | 第37-39页 |
| 3.2.1试剂与仪器 | 第37-38页 |
| 3.2.2Ce-FDPCNPs的制备 | 第38页 |
| 3.2.3ALP活性的检测 | 第38页 |
| 3.2.4AFP的免疫分析 | 第38-39页 |
| 3.3结果与讨论 | 第39-48页 |
| 3.3.1Ce-FDPCNPs的制备与表征 | 第39-41页 |
| 3.3.2ALP传感的可行性 | 第41-43页 |
| 3.3.3优化反应条件 | 第43页 |
| 3.3.4ALP的分析性能 | 第43-45页 |
| 3.3.5AFP传感原理及测试性能 | 第45-47页 |
| 3.3.6人血清样品中AFP的检测 | 第47-48页 |
| 3.4结论 | 第48-50页 |
| 第4章双功能抗体及铜有机框架纳米复合材料用于超灵敏检测AFP | 第50-67页 |
| 4.1引言 | 第50-51页 |
| 4.2实验部分 | 第51-53页 |
| 4.2.1试剂与仪器 | 第51-52页 |
| 4.2.2Cu2+抑制荧光素的光诱导氧化酶活性 | 第52页 |
| 4.2.3电子自旋共振（EPR）实验 | 第52-53页 |
| 4.2.4Cu-MOF的制备 | 第53页 |
| 4.2.5Ab2@Cu-MOF制备 | 第53页 |
| 4.2.6基于Ab2@Cu-MOF检测AFP | 第53页 |
| 4.3结果与讨论 | 第53-64页 |
| 4.3.1用Cu2+调控荧光素的光诱导氧化酶活性及其机制探究 | 第53-56页 |
| 4.3.2Cu2+检测性能 | 第56-58页 |
| 4.3.3Cu-MOF和Ab2@Cu-MOF的设计原理和表征 | 第58-62页 |
| 4.3.4Ab2@Cu-MOF免疫法检测AFP的性能和选择性 | 第62-64页 |
| 4.3.5测定人血清样品中的AFP | 第64页 |
| 4.4结论 | 第64-67页 |
| 第5章全文总结与展望 | 第67-70页 |
| 5.1全文总结 | 第67-68页 |
| 5.2展望 | 第68-70页 |
| 参考文献 | 第70-80页 |
| 硕士期间已发表的研究成果 | 第80-82页 |
| 致谢 | 第82页 |
