| 摘要 | 第7-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 1 文献综述 | 第11-21页 |
| 前言 | 第11页 |
| 1.1 果胶的概述 | 第11-14页 |
| 1.1.1 果胶的结构 | 第12-13页 |
| 1.1.2 果胶的修饰 | 第13页 |
| 1.1.3 果胶的生物学功能 | 第13-14页 |
| 1.2 果胶对植物生长发育的影响 | 第14-16页 |
| 1.2.1 果胶与根发育的研究进展 | 第14-15页 |
| 1.2.2 果胶与种子发育以及萌发的研究进展 | 第15-16页 |
| 1.3 果胶修饰酶的研究进展 | 第16-20页 |
| 1.3.1 果胶甲脂化酶的研究进展 | 第16-17页 |
| 1.3.2 果胶甲基转移酶的研究进展 | 第17-20页 |
| 1.4 本研究的目的和意义 | 第20-21页 |
| 2 实验材料和方法 | 第21-30页 |
| 2.1 实验材料 | 第21-22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-30页 |
| 2.2.1 水稻样品DNA提取 | 第22页 |
| 2.2.2 水稻样品RNA提取 | 第22-23页 |
| 2.2.3 反转录、RT-PCR和qRT-PCR | 第23-25页 |
| 2.2.4 生物信息学分析 | 第25页 |
| 2.2.5 组织特异性实验 | 第25-26页 |
| 2.2.6 ABA胁迫实验 | 第26页 |
| 2.2.7 细胞粘附性实验 | 第26页 |
| 2.2.8 根部生长状况观察及数据统计 | 第26-27页 |
| 2.2.9 激素检测 | 第27页 |
| 2.2.10 农艺性状统计钌红染色实验 | 第27页 |
| 2.2.11 花粉粒活性实验以及雌蕊形态观察 | 第27-28页 |
| 2.2.12 农艺性状统计 | 第28页 |
| 2.2.13 种子萌发实验 | 第28页 |
| 2.2.14 石蜡切片制作实验 | 第28-29页 |
| 2.2.15 果胶甲基化程度分析 | 第29-30页 |
| 3 实验结果 | 第30-50页 |
| 3.1 tsd2突变体的获得及分析 | 第30-33页 |
| 3.1.1 突变体的获得 | 第30页 |
| 3.1.2 突变体的表型 | 第30-32页 |
| 3.1.3 生物信息学分析 | 第32-33页 |
| 3.2 OsTSD2基因的表达模式 | 第33-35页 |
| 3.2.1 基因在不同生育时期的qRT结果 | 第33-34页 |
| 3.2.2 结果基因发育时期的GUS染色结果 | 第34-35页 |
| 3.3 突变体的细胞粘附性分析 | 第35-37页 |
| 3.4 突变体的根发育研究 | 第37-42页 |
| 3.4.1 突变体的根的表型 | 第37-39页 |
| 3.4.2 突变体的根部的激素水平变化 | 第39-40页 |
| 3.4.3 ABA合成以及信号途径基因在突变体中的变化 | 第40-41页 |
| 3.4.4 突变体的根部的果胶含量的变化 | 第41-42页 |
| 3.5 OsTSD2基因对种子形成的影响 | 第42-47页 |
| 3.5.1 突变体的花粉粒活性以及雌蕊形态 | 第43页 |
| 3.5.2 突变体的结实率 | 第43-44页 |
| 3.5.3 突变体的粒型,千粒重的变化 | 第44-45页 |
| 3.5.4 突变体种子颖壳的颜色以及破裂情况 | 第45-47页 |
| 3.6 OsTSD2基因对种子萌发的影响 | 第47-50页 |
| 3.6.1 突变体在正常情况下的萌发率 | 第47-48页 |
| 3.6.2 突变体的萌发种子果胶修饰分析 | 第48-50页 |
| 4 讨论与展望 | 第50-56页 |
| 4.1 讨论 | 第50-54页 |
| 4.1.1 OsTSD2基因编码一个果胶甲基转移酶 | 第50-51页 |
| 4.1.2 OsTSD2基因调控水稻根的生长 | 第51-52页 |
| 4.1.3 OsTSD2基因影响水稻种子的发育 | 第52-53页 |
| 4.1.4 OsTSD2基因影响水稻种子的萌发 | 第53-54页 |
| 4.2 展望 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |