| 摘要 | 第7-11页 |
| ABSTRACT | 第11-15页 |
| 绪论 | 第16-17页 |
| 第一章 文献综述 | 第17-47页 |
| 1 噻二唑化合物研究进展 | 第17-25页 |
| 1.1 2-氨基-噻二唑类化合物 | 第18-21页 |
| 1.1.1 敌枯唑 | 第19页 |
| 1.1.2 敌枯双 | 第19-20页 |
| 1.1.3 噻枯唑 | 第20页 |
| 1.1.4 噻唑锌 | 第20-21页 |
| 1.2 其他类别的噻二唑类化合物 | 第21-25页 |
| 1.2.1 碳酸酐酶活性抑制剂 | 第21-23页 |
| 1.2.2 植物防卫反应诱导剂 | 第23-25页 |
| 2 水稻白叶枯病菌致病因子研究进展 | 第25-34页 |
| 2.1 水稻白叶枯病的来源、病原物形态生理特性及其分布 | 第25-26页 |
| 2.2 水稻白叶枯病的病害循环及流行条件 | 第26-27页 |
| 2.3 水稻白叶枯病菌致病因子的鉴定 | 第27-31页 |
| 2.3.1 重要的细菌表面结构 | 第27-29页 |
| 2.3.2 致病相关蛋白及其分泌系统 | 第29-31页 |
| 2.4 黄单胞菌致病力相关的调控网络 | 第31-34页 |
| 参考文献 | 第34-47页 |
| 第二章 噻枯唑的光解特性:光解产物的鉴定及抑菌活性研究 | 第47-61页 |
| 1 材料与方法 | 第48-51页 |
| 1.1 供试菌株与水稻 | 第48页 |
| 1.2 供试药剂 | 第48页 |
| 1.3 培养基 | 第48页 |
| 1.4 光解条件 | 第48-49页 |
| 1.5 光解产物的液质联用分析 | 第49页 |
| 1.6 噻枯唑光解溶液对Xoo的抑菌活性测定 | 第49-50页 |
| 1.7 噻枯唑及其光解产物对Xoo的抑菌活性测定 | 第50页 |
| 1.7.1 噻枯唑及其光解产物对Xoo的抑制中浓度测定 | 第50页 |
| 1.7.2 噻枯唑及其光解产物对Xoo的最小抑制浓度测定 | 第50页 |
| 1.7.3 噻枯唑及其光解产物对Xoo的活体抗病活性 | 第50页 |
| 1.8 数据处理 | 第50-51页 |
| 2 结果与分析 | 第51-56页 |
| 2.1 噻枯唑的光解特性 | 第51-52页 |
| 2.2 噻枯唑光解溶液对Xoo的抑菌活性 | 第52页 |
| 2.3 光解产物 | 第52-54页 |
| 2.4 噻枯唑及其光解产物对Xoo的抑菌活性 | 第54-56页 |
| 2.4.1 噻枯唑及其光解产物对Xoo的EC_(50)和MICs | 第54-55页 |
| 2.4.2 噻枯唑及其光解产物对Xoo的活体抗病活性 | 第55-56页 |
| 3 总结 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-61页 |
| 第三章 噻枯唑及其同系物噻唑锌对水稻防卫反应诱导作用及机制 | 第61-83页 |
| 1 材料与方法 | 第62-65页 |
| 1.1 菌株、水稻品种和培养条件 | 第62页 |
| 1.2 供试药剂 | 第62页 |
| 1.3 植物处理方法 | 第62页 |
| 1.4 水稻叶片中的H_2O_2含量测定 | 第62-63页 |
| 1.5 水稻的防卫基因表达量测定 | 第63页 |
| 1.6 水稻白叶病菌的致病力测定 | 第63页 |
| 1.7 水稻叶片中活菌数测定 | 第63-64页 |
| 1.8 水稻叶片细胞防卫反应的测定 | 第64页 |
| 1.9 苯丙氨酸解氨酶活性和水杨酸含量测定 | 第64页 |
| 1.10 Xoo的EPS产量和合成基因表达量测定 | 第64-65页 |
| 1.11 EPS纯化 | 第65页 |
| 2 结果 | 第65-75页 |
| 2.1 噻唑锌对接种Xoo水稻叶片的H_2O_2含量影响 | 第65-67页 |
| 2.2 噻唑锌浓度对水稻叶片中H_2O_2含量和活菌数的影响 | 第67页 |
| 2.3 噻唑锌对水稻防卫基因表达量的影响 | 第67-68页 |
| 2.4 噻枯唑对水稻H_2O_2含量和防卫基因表达量的影响 | 第68-69页 |
| 2.5 噻枯唑和噻唑锌对水稻细胞防卫反应的诱导作用 | 第69-70页 |
| 2.6 噻枯唑和噻唑锌对EPS生物合成的抑制作用 | 第70-71页 |
| 2.7 Xoo的EPS对水稻防卫反应的影响 | 第71-72页 |
| 2.8 EPS对噻枯唑及同系物诱导防卫反应的颉颃作用 | 第72-74页 |
| 2.9 噻枯唑和噻唑锌对2-1-1的EPS产量和接种有2-1-1的水稻防卫反应影响 | 第74-75页 |
| 3 讨论 | 第75-77页 |
| 参考文献 | 第77-83页 |
| 第四章 噻枯唑对Xoo致病力的抑制作用及机制 | 第83-111页 |
| 1 材料与方法 | 第84-89页 |
| 1.1 菌株、质粒、水稻品种和培养条件 | 第84-85页 |
| 1.2 供试药剂 | 第85-86页 |
| 1.3 噻枯唑对Xoo的离体和活体EC_(50)值测定 | 第86页 |
| 1.4 RNA-seq和转录组数据获取 | 第86页 |
| 1.5 转录组数据的实时定量PCR验证 | 第86-88页 |
| 1.6 缺失突变体和回复体的构建 | 第88页 |
| 1.7 组氨酸代谢缺失突变体的生物学表型 | 第88-89页 |
| 1.7.1 生长曲线测定 | 第88-89页 |
| 1.7.2 酶活、游动性和生物膜测定 | 第89页 |
| 1.7.3 致病力测定 | 第89页 |
| 1.7.4 EPS产量测定 | 第89页 |
| 2 结果 | 第89-103页 |
| 2.1 噻枯唑在离体和活体条件下对Xoo有不同的抑制活性 | 第89-90页 |
| 2.2 噻枯唑处理的Xoo转录组数据统计 | 第90页 |
| 2.3 RNA-Seq的实时定量PCR验证结果 | 第90-91页 |
| 2.4 组氨酸代谢和氧化磷酸化代谢途径基因分别被噻枯唑抑制和诱导 | 第91-94页 |
| 2.5 噻枯唑抑制Xoo的组氨酸代谢途径的基因表达 | 第94-96页 |
| 2.6 组氨酸代谢途径的基因分析 | 第96-98页 |
| 2.7 组氨酸代谢途径不影响Xoo的生长和对噻枯唑的离体药敏性 | 第98-99页 |
| 2.8 组氨酸代谢途径影响生长后期的Xoo的聚集 | 第99-100页 |
| 2.9 组氨酸代谢途径影响Xoo群集反应 | 第100-101页 |
| 2.10 噻枯唑不抑制Xoo 2-1-1的组氨酸代谢途径基因和群集反应 | 第101-103页 |
| 3 讨论 | 第103-106页 |
| 参考文献 | 第106-111页 |
| 第五章 噻枯唑抗性菌株2-1-1遗传基因变异的初步分析 | 第111-123页 |
| 1 材料与方法 | 第111-112页 |
| 1.1 菌株和培养条件 | 第111页 |
| 1.2 2-1-1的基因组提取 | 第111-112页 |
| 1.3 2-1-1的基因重测序 | 第112页 |
| 1.4 2-1-1和ZJ173的SNP、InDel和SV差异比较 | 第112页 |
| 1.5 差异位点归类和验证 | 第112页 |
| 2 结果与分析 | 第112-117页 |
| 2.1 2-1-1基因组的提取过程 | 第112-114页 |
| 2.2 2-1-1基因组的测序深度 | 第114页 |
| 2.3 2-1-1和ZJ173基因组与标准菌株的基因组比对结果 | 第114页 |
| 2.4 2-1-1基因组的测序深度在MAFF基因组上的分布 | 第114页 |
| 2.5 2-1-1和ZJ173的SNP差异统计 | 第114-116页 |
| 2.6 SNP的差异验证结果 | 第116-117页 |
| 3 总结 | 第117-119页 |
| 参考文献 | 第119-123页 |
| 结论 | 第123-125页 |
| 附录 | 第125-139页 |
| 攻读博士学位期间发表的学术论文 | 第139-141页 |
| 致谢 | 第141页 |
