| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 1 引言 | 第10-26页 |
| 1.1 有关植物叶衰老的研究进展 | 第10页 |
| 1.2 植物叶衰老的生物学特征 | 第10-12页 |
| 1.2.1 植物叶衰老的生理特征 | 第10-11页 |
| 1.2.2 植物叶衰老的细胞学特征 | 第11页 |
| 1.2.3 植物叶衰老的分子生物学特征 | 第11-12页 |
| 1.3 影响植物叶衰老的因素及调控机制 | 第12-17页 |
| 1.3.1 植物激素 | 第13-15页 |
| 1.3.2 活性氧 | 第15-16页 |
| 1.3.3 环境因素 | 第16-17页 |
| 1.3.4 糖信号 | 第17页 |
| 1.4 UDP-N-乙酰氨基葡萄糖焦磷酸化酶基因概述 | 第17-19页 |
| 1.5 UDP-N-乙酰氨基葡萄糖(UDP-GlcNAc)的研究概述 | 第19-21页 |
| 1.5.1 UDP-N-乙酰氨基葡萄糖(UDP-GlcNAc)概况 | 第19页 |
| 1.5.2 UDP-N-乙酰氨基葡萄糖的生物合成途径 | 第19-21页 |
| 1.6 蛋白糖基化的概述 | 第21-24页 |
| 1.6.1 蛋白质糖基化类型 | 第21-23页 |
| 1.6.2 复杂N-聚糖的形成过程 | 第23-24页 |
| 1.7 本研究的目的及意义 | 第24-26页 |
| 2 材料与方法 | 第26-40页 |
| 2.0 水稻材料及其培养种植 | 第26页 |
| 2.1 转基因植株的草磷酸抗性筛选及阳性植株检测 | 第26-27页 |
| 2.2 叶绿素含量测定 | 第27页 |
| 2.3 荧光定量分析 | 第27-34页 |
| 2.3.1 总RNA提取 | 第27-28页 |
| 2.3.2 总RNA的DNase消化、再回收与检测 | 第28页 |
| 2.3.3 cDNA第一链的合成 | 第28-29页 |
| 2.3.4 荧光定量引物的设计及扩增效率的筛选 | 第29-30页 |
| 2.3.5 荧光定量PCR操作 | 第30页 |
| 2.3.6 用于荧光定量PCR分析的内参选择 | 第30-34页 |
| 2.5 叶片中总蛋白检测及Western分析 | 第34-40页 |
| 2.5.1 总蛋白的提取 | 第34页 |
| 2.5.2 叶片总蛋白的检测 | 第34-38页 |
| 2.5.3 叶片总蛋白的Western分析 | 第38-40页 |
| 3 结果与分析 | 第40-56页 |
| 3.1 在自然叶衰老过程中UAP1和UAP2基因的表达模式 | 第40-44页 |
| 3.1.1 在自然衰老过程中ZH11叶片中叶绿素含量下降 | 第40-41页 |
| 3.1.2 在自然衰老过程中ZH11叶片衰老相关基因表达上调 | 第41-43页 |
| 3.1.3 在自然叶衰老过程中,UAP1基因表达上调,UAP2基因表达无明显差异 | 第43-44页 |
| 3.2 黑暗诱导叶衰老过程中UAP1和UAP2基因的表达模式 | 第44-51页 |
| 3.2.1 黑暗诱导叶衰老过程中表型性状显著 | 第44-45页 |
| 3.2.2 黑暗诱导叶衰老过程中叶绿素含量的下降 | 第45-47页 |
| 3.2.3 黑暗诱导叶衰老过程中衰老相关基因表达值升高 | 第47-50页 |
| 3.2.4 黑暗诱导叶衰老过程中UAP1和UAP2表达值上调 | 第50-51页 |
| 3.3 UAP1基因过表达不能延缓叶片衰老 | 第51-54页 |
| 3.3.1 转基因植株的阳性检测 | 第52-53页 |
| 3.3.2 转基因植株在黑暗胁迫下不能延缓衰老 | 第53-54页 |
| 3.4 衰老过程中蛋白质糖基化水平发生改变 | 第54-56页 |
| 4 讨论 | 第56-60页 |
| 参考文献 | 第60-69页 |
| 硕士在读期间发表和投稿的科研成果 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
