| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 英文缩略词表 | 第12-13页 |
| 第1章 绪论 | 第13-21页 |
| 1.1 桑黄的研究现状 | 第13-15页 |
| 1.1.1 桑黄简介及自然分布 | 第13页 |
| 1.1.2 桑黄的主要化学成分 | 第13页 |
| 1.1.3 桑黄药理作用 | 第13-15页 |
| 1.2 桑黄多糖的研究进展 | 第15-18页 |
| 1.2.1 桑黄液体发酵技术 | 第15-16页 |
| 1.2.2 桑黄菌丝多糖的提取方法 | 第16-17页 |
| 1.2.3 桑黄多糖的理化性质研究 | 第17页 |
| 1.2.4 桑黄多糖的化学结构研究 | 第17页 |
| 1.2.5 桑黄多糖生物活性功能研究 | 第17-18页 |
| 1.3 真菌多糖结构与活性关系的研究进展 | 第18-19页 |
| 1.4 研究的目的、意义及内容 | 第19-21页 |
| 1.4.1 研究目的及意义 | 第19页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第19-21页 |
| 第2章 桑黄菌丝多糖的提取方法研究 | 第21-29页 |
| 2.1 引言 | 第21页 |
| 2.2 实验材料 | 第21-22页 |
| 2.2.1 菌种 | 第21-22页 |
| 2.2.2 试剂 | 第22页 |
| 2.2.3 仪器 | 第22页 |
| 2.3 实验方法 | 第22-25页 |
| 2.3.1 桑黄菌丝多糖培养基及培养条件 | 第22-23页 |
| 2.3.2 桑黄菌丝多糖提取方法比较 | 第23页 |
| 2.3.3 桑黄菌丝多糖含量的测定及提取得率的计算 | 第23页 |
| 2.3.4 桑黄菌丝多糖总抗氧化活性的测定 | 第23-24页 |
| 2.3.5 数据处理 | 第24-25页 |
| 2.4 结果与分析 | 第25-27页 |
| 2.4.1 桑黄发酵过程中桑黄菌丝生长监测结果 | 第25-26页 |
| 2.4.2 热水浸提法提取桑黄菌丝多糖的实验结果 | 第26页 |
| 2.4.3 超声破碎法提取桑黄菌丝多糖的实验结果 | 第26页 |
| 2.4.4 低温低压法提取桑黄菌丝多糖的实验结果 | 第26-27页 |
| 2.5 讨论 | 第27-29页 |
| 第3章 低温低压法提取桑黄菌丝体活性多糖的工艺优化 | 第29-41页 |
| 3.1 引言 | 第29页 |
| 3.2 实验材料 | 第29-30页 |
| 3.2.1 菌种 | 第29页 |
| 3.2.2 试剂 | 第29页 |
| 3.2.3 仪器 | 第29-30页 |
| 3.3 实验方法 | 第30-31页 |
| 3.3.1 桑黄发酵生产菌丝多糖的培养基及培养条件 | 第30页 |
| 3.3.2 桑黄菌丝粗多糖提取的工艺流程 | 第30页 |
| 3.3.3 桑黄菌丝多糖含量的测定及提取得率的计算 | 第30页 |
| 3.3.4 桑黄菌丝多糖总抗氧化活性的测定 | 第30页 |
| 3.3.5 单因素及响应面试验设计 | 第30-31页 |
| 3.3.6 数据处理 | 第31页 |
| 3.4 结果与分析 | 第31-38页 |
| 3.4.1 单因素试验结果 | 第31-33页 |
| 3.4.2 响应面试验设计及结果 | 第33-38页 |
| 3.5 讨论 | 第38-41页 |
| 第4章 桑黄菌丝体活性多糖的分离纯化和理化性质研究 | 第41-57页 |
| 4.1 引言 | 第41页 |
| 4.2 实验材料 | 第41-42页 |
| 4.2.1 试剂 | 第41-42页 |
| 4.2.2 仪器 | 第42页 |
| 4.3 实验方法 | 第42-46页 |
| 4.3.1 桑黄菌丝多糖培养基及培养条件 | 第42页 |
| 4.3.2 桑黄菌丝粗多糖提取的工艺流程 | 第42页 |
| 4.3.3 桑黄菌丝粗多糖的预处理 | 第42-43页 |
| 4.3.4 桑黄菌丝多糖的分离纯化 | 第43-44页 |
| 4.3.5 纯度验证 | 第44页 |
| 4.3.6 多糖表观分子量的测定 | 第44-45页 |
| 4.3.7 多糖的单糖组成分析 | 第45-46页 |
| 4.3.8 红外光谱(IR)分析胞内多糖 | 第46页 |
| 4.4 结果与分析 | 第46-55页 |
| 4.4.1 桑黄菌丝粗多糖的预处理结果 | 第46-48页 |
| 4.4.2 桑黄菌丝多糖的分离纯化 | 第48-50页 |
| 4.4.3 多糖组分SHJS1和SHJS4的纯度验证 | 第50-51页 |
| 4.4.4 桑黄菌丝多糖SHJS1和SHJS3的平均分子量测定结果 | 第51-52页 |
| 4.4.5 多糖组分SHJS1和SHJS4的单糖组成分析 | 第52-53页 |
| 4.4.6 桑黄胞内多糖红外光谱扫描(IR)分析结果 | 第53-55页 |
| 4.5 讨论 | 第55-57页 |
| 第5章 桑黄胞内多糖SHJS1和SHJS4的结构鉴定 | 第57-67页 |
| 5.1 引言 | 第57页 |
| 5.2 实验材料 | 第57-58页 |
| 5.2.1 样品 | 第57-58页 |
| 5.2.2 试剂 | 第58页 |
| 5.2.3 仪器 | 第58页 |
| 5.3 实验方法 | 第58-59页 |
| 5.3.1 甲基化反应 | 第58-59页 |
| 5.3.2 核磁分析 | 第59页 |
| 5.4 实验结果 | 第59-65页 |
| 5.4.1 多糖SHJS1和SHJS4的甲基化反应结果 | 第59-60页 |
| 5.4.2 多糖SHJS1和SHJS4的核磁分析结果 | 第60-65页 |
| 5.5 讨论 | 第65-67页 |
| 第6章 桑黄胞内多糖SHJS1和SHJS4体内免疫活性研究 | 第67-76页 |
| 6.1 引言 | 第67页 |
| 6.2 实验材料 | 第67-68页 |
| 6.2.1 样品 | 第67页 |
| 6.2.2 供试小鼠 | 第67页 |
| 6.2.3 试剂 | 第67-68页 |
| 6.2.4 仪器 | 第68页 |
| 6.3 实验方法 | 第68-70页 |
| 6.3.1 小鼠饲养 | 第68页 |
| 6.3.2 实验小鼠分组给药 | 第68页 |
| 6.3.3 试验小鼠血样本采集 | 第68页 |
| 6.3.4 小鼠体内细胞因子的测定 | 第68-70页 |
| 6.4 结果与分析 | 第70-74页 |
| 6.4.1 小鼠血清中IFN-a的含量检测 | 第70-71页 |
| 6.4.2 小鼠血清中IFN-γ的含量检测 | 第71-72页 |
| 6.4.3 小鼠血清中IL-2的含量检测 | 第72-73页 |
| 6.4.4 小鼠血清中IL-4的含量检测 | 第73-74页 |
| 6.5 讨论 | 第74-76页 |
| 第7章 桑黄胞外多糖SH1-3和SH4-1的结构鉴定 | 第76-86页 |
| 7.1 引言 | 第76页 |
| 7.2 实验材料 | 第76页 |
| 7.2.1 样品 | 第76页 |
| 7.2.2 试剂 | 第76页 |
| 7.2.3 仪器 | 第76页 |
| 7.3 实验方法 | 第76-77页 |
| 7.3.1 多糖SHJS1和SHJS4的甲基化反应 | 第76页 |
| 7.3.2 多糖SHJS1和SHJS4的核磁分析 | 第76-77页 |
| 7.4 结果与分析 | 第77-83页 |
| 7.4.1 多糖SH1-3和SH4-1的甲基化结果 | 第77-78页 |
| 7.4.2 SH1-3和SH4-1核磁分析结果 | 第78-83页 |
| 7.5 讨论 | 第83-86页 |
| 第8章 桑黄胞外多糖抗衰老活性功能研究 | 第86-98页 |
| 8.1 引言 | 第86-87页 |
| 8.2 实验材料 | 第87-88页 |
| 8.2.1 样品 | 第87页 |
| 8.2.2 供试小鼠 | 第87页 |
| 8.2.3 试剂 | 第87页 |
| 8.2.4 仪器 | 第87-88页 |
| 8.3 实验方法 | 第88-91页 |
| 8.3.1 桑黄胞外多糖纯品制备 | 第88页 |
| 8.3.2 小鼠饲养 | 第88页 |
| 8.3.3 实验小鼠衰老模型的建立以及试验分组给药 | 第88页 |
| 8.3.4 试验小鼠血样本和器官的采集 | 第88-89页 |
| 8.3.5 生理生化指标的测定 | 第89-90页 |
| 8.3.6 肝组织石蜡切片的制作及HE染色 | 第90-91页 |
| 8.3.7 统计分析 | 第91页 |
| 8.4 结果与分析 | 第91-96页 |
| 8.4.1 桑黄多糖SH1-3和SH4-1对小鼠脏器指数的影响 | 第91-92页 |
| 8.4.2 桑黄胞外多糖SH1-3和SH4-1对小鼠各项生理生化指标的影响 | 第92-95页 |
| 8.4.3 桑黄胞外多糖SH1-3和SH4-1影响小鼠肝组织的石蜡切片观察 | 第95-96页 |
| 8.5 讨论 | 第96-98页 |
| 第9章 结论与展望 | 第98-100页 |
| 9.1 结论 | 第98-99页 |
| 9.2 展望 | 第99-100页 |
| 参考文献 | 第100-112页 |
| 附图 | 第112-128页 |
| 致谢 | 第128-130页 |
| 攻读硕士学位期间科研成果 | 第130页 |
