| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 第1章 文献综述 | 第12-22页 |
| 1.1 前言 | 第12页 |
| 1.2 环烯醚萜苷的化学成分与理化性质 | 第12-13页 |
| 1.3 山茱萸环烯醚萜苷的药理特性 | 第13-15页 |
| 1.3.1 山茱萸环烯醚萜苷在缓解糖尿病方面的作用 | 第13-14页 |
| 1.3.2 山茱萸环烯醚萜苷对脑组织的保护作用 | 第14页 |
| 1.3.3 山茱萸环烯醚萜苷对肝损伤的防治作用 | 第14页 |
| 1.3.4 山茱萸环烯醚萜苷对免疫系统的作用 | 第14-15页 |
| 1.3.5 山茱萸环烯醚萜苷抗炎活性 | 第15页 |
| 1.3.6 山茱萸环烯醚萜苷抗血栓效应 | 第15页 |
| 1.4 环烯醚萜苷及其它活性成分缓解糖尿病机制 | 第15-17页 |
| 1.4.1 抑制α葡萄糖苷酶途径 | 第15-16页 |
| 1.4.2 抑制晚期糖基化终末产物(AGEs)的积累 | 第16页 |
| 1.4.3 调节糖脂代谢,促进胰岛素分泌 | 第16-17页 |
| 1.4.4 调控氧化应激、炎症反应和细胞凋亡途径 | 第17页 |
| 1.5 山茱萸活性成分提取与纯化工艺进展 | 第17-20页 |
| 1.5.1 加热提取法 | 第18页 |
| 1.5.2 浸泡提取法 | 第18页 |
| 1.5.3 微波辅助提取法 | 第18页 |
| 1.5.4 超声提取法 | 第18-19页 |
| 1.5.5 超高压提取法 | 第19页 |
| 1.5.6 压力溶剂萃取法 | 第19页 |
| 1.5.7 星点设计-响应面结合、正交实验法优化提取条件 | 第19-20页 |
| 1.5.8 大孔树脂分离、纯化 | 第20页 |
| 1.6 本课题研究的目的、意义 | 第20-22页 |
| 第2章 响应面法优化超声-微波协同提取法山茱萸环烯醚萜苷 | 第22-34页 |
| 2.1 实验材料和仪器 | 第22-23页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第22页 |
| 2.1.2 实验仪器与试剂 | 第22-23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-25页 |
| 2.2.1 对照品溶液的制备 | 第23页 |
| 2.2.2 样品溶液的制备 | 第23页 |
| 2.2.3 HPLC色谱条件 | 第23页 |
| 2.2.4 标准曲线的绘制 | 第23-24页 |
| 2.2.5 单因素试验 | 第24页 |
| 2.2.6 响应面优化试验 | 第24页 |
| 2.2.7 不同提取方法的比较 | 第24-25页 |
| 2.3 数据处理与分析 | 第25页 |
| 2.4 实验结果与分析 | 第25-33页 |
| 2.4.1 单因素实验结果 | 第25-27页 |
| 2.4.2 响应面实验结果 | 第27-33页 |
| 2.5 讨论 | 第33-34页 |
| 第3章 D101型大孔树脂富集山茱萸环烯醚萜苷工艺研究 | 第34-38页 |
| 3.1 实验材料和仪器 | 第34页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第34页 |
| 3.1.2 仪器与试剂 | 第34页 |
| 3.2 实验方法 | 第34-36页 |
| 3.2.1 混合对照品溶液的制备 | 第34-35页 |
| 3.2.2 供试品溶液的制备 | 第35页 |
| 3.2.3 HPLC色谱条件 | 第35页 |
| 3.2.4 大孔树脂预处理 | 第35页 |
| 3.2.5 山茱萸环烯醚萜苷大孔树脂洗脱工艺 | 第35页 |
| 3.2.6 大孔树脂型号的选择 | 第35页 |
| 3.2.7 最佳静态吸附时间和解析时间的确定 | 第35-36页 |
| 3.2.8 山茱萸环烯醚萜苷纯度的计算 | 第36页 |
| 3.3 实验结果 | 第36-37页 |
| 3.3.1 树脂型号的筛选 | 第36页 |
| 3.3.2 静态吸附时间和解析时间的确定 | 第36-37页 |
| 3.3.3 山茱萸环烯醚萜苷的纯度 | 第37页 |
| 3.4 讨论 | 第37-38页 |
| 第4章 HPLC法同时测定不同产地山茱萸环烯醚萜苷的含量 | 第38-44页 |
| 4.1 实验材料和仪器 | 第38-39页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第38-39页 |
| 4.1.2 实验仪器与试剂 | 第39页 |
| 4.2 混合对照品溶液的制备 | 第39页 |
| 4.3 供试品溶液的制备 | 第39页 |
| 4.4 色谱条件 | 第39-40页 |
| 4.5 方法学考察 | 第40-41页 |
| 4.5.1 线性关系考察 | 第40页 |
| 4.5.2 精密度试验 | 第40页 |
| 4.5.3 重现性试验 | 第40页 |
| 4.5.4 稳定性试验 | 第40页 |
| 4.5.5 加样回收率试验 | 第40-41页 |
| 4.6 不同产地山茱萸环烯醚萜苷的含量比较 | 第41页 |
| 4.7 讨论 | 第41-44页 |
| 4.7.1 产地因素对山茱萸环烯醚萜苷含量的影响 | 第41-42页 |
| 4.7.2 色谱条件的优化 | 第42-44页 |
| 第5章 山茱萸环烯醚萜苷改善糖尿病的相关机制研究 | 第44-64页 |
| 5.1 实验材料与仪器 | 第44-46页 |
| 5.1.1 实验材料 | 第44-45页 |
| 5.1.2 仪器与试剂 | 第45-46页 |
| 5.2 实验方法 | 第46-51页 |
| 5.2.1 糖尿病模型的建立 | 第46页 |
| 5.2.2 动物分组实验及给药 | 第46-47页 |
| 5.2.3 标本的采集 | 第47页 |
| 5.2.4 检测指标 | 第47-51页 |
| 5.2.5 统计学分析 | 第51页 |
| 5.3 实验结果 | 第51-60页 |
| 5.3.1 山茱萸环烯醚萜苷对各组小鼠糖脂代谢的影响 | 第51-55页 |
| 5.3.2 山茱萸环烯醚萜苷对各组小鼠肝脏炎症及氧化应激的影响 | 第55-56页 |
| 5.3.3 山茱萸环烯醚萜苷对各组小鼠肝脏和胰腺组织病理形态的影响 | 第56-59页 |
| 5.3.4 山茱萸环烯醚萜苷对各组小鼠骨骼肌GLUT-4、INSR、PI3K及PKB mRNA表达的影响 | 第59-60页 |
| 5.4 讨论 | 第60-64页 |
| 5.4.1 山茱萸环烯醚萜苷对各组小鼠糖脂代谢的影响 | 第60-61页 |
| 5.4.2 山茱萸环烯醚萜苷对各组小鼠肝脏炎症及氧化应激的影响 | 第61-62页 |
| 5.4.3 山茱萸环烯醚萜苷对各组小鼠肝脏和胰腺组织病理形态的影响 | 第62页 |
| 5.4.4 山茱萸环烯醚萜苷对各组小鼠骨骼肌组织GLUT-4、INSR、PI3K、PKBmRNA表达的影响 | 第62-64页 |
| 第6章 结论 | 第64-66页 |
| 6.1 山茱萸环烯醚萜苷提取工艺优化 | 第64页 |
| 6.2 6个产地山茱萸环烯醚萜苷定性与定量分析 | 第64-65页 |
| 6.3 山茱萸环烯醚萜苷药理特性 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-78页 |
| 致谢 | 第78-80页 |
| 攻读硕士学位期间的研究成果 | 第80页 |
