| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第10-12页 |
| 前言 | 第12-16页 |
| 研究现状、成果 | 第12-14页 |
| 研究目的、方法 | 第14-16页 |
| 1.对象和方法 | 第16-44页 |
| 1.1 实验动物 | 第16页 |
| 1.2 实验细胞 | 第16页 |
| 1.3 主要实验仪器 | 第16-18页 |
| 1.4 主要实验试剂 | 第18-20页 |
| 1.5 实验方法 | 第20-44页 |
| 1.5.1 MCAO模型的构建 | 第20-21页 |
| 1.5.2 条件性敲除小鼠的基因鉴定 | 第21-23页 |
| 1.5.3 脑组织蛋白的提取和WesternBlot | 第23-25页 |
| 1.5.4 Q-PCR | 第25-27页 |
| 1.5.5 免疫荧光染色 | 第27-28页 |
| 1.5.6 使用Imaris进行3D图像生成 | 第28页 |
| 1.5.7 小鼠行为学评分 | 第28-30页 |
| 1.5.8 血脑屏障完整性评价 | 第30-31页 |
| 1.5.9 流式细胞术 | 第31-32页 |
| 1.5.10 凋亡细胞的检测(Annexin V-FITC PI凋亡检测试剂盒) | 第32-33页 |
| 1.5.11 酶联免疫吸附反应 | 第33-34页 |
| 1.5.12 原代细胞的分离 | 第34-36页 |
| 1.5.13 细胞迁移实验 | 第36页 |
| 1.5.14 基因芯片分析 | 第36页 |
| 1.5.15 构建腺相关病毒载体以及病毒体内注射 | 第36-37页 |
| 1.5.16 TGF-b1基因质粒亚克隆 | 第37-39页 |
| 1.5.17 双荧光素酶检测实验 | 第39-40页 |
| 1.5.18 染色质免疫共沉淀(CHIP) | 第40-42页 |
| 1.5.19 数据统计 | 第42-44页 |
| 2.实验结果 | 第44-61页 |
| 2.1 ZEB1在卒中后表达水平升高且主要表达在小胶质细胞中 | 第44-45页 |
| 2.2 小胶质细胞中高表达ZEB1减轻了缺血性脑卒中损伤 | 第45-47页 |
| 2.2.1 构建小胶质细胞过表达以及低表达ZEB1小鼠 | 第45-46页 |
| 2.2.2 缺血性脑卒中后ZEB1-TG小鼠脑损伤较野生型小鼠减轻,ZEB1-KD小鼠脑损伤加重 | 第46-47页 |
| 2.3 ZEB1影响小胶质细胞形态 | 第47-49页 |
| 2.4 ZEB1影响小胶质细胞功能 | 第49-51页 |
| 2.5 小胶质细胞中过表达ZEB1减少了缺血性脑卒中后中性粒细胞向中枢浸润 | 第51-53页 |
| 2.7 ZEB1高表达减少了缺血性脑卒中后CXCL1的水平 | 第53-54页 |
| 2.8 ZEB1-TG小胶质细胞和星形胶质细胞共培养明显减少中性粒细胞的趋化能力 | 第54-56页 |
| 2.9 ZEB1可以和转化生长因子-β1的启动子区域的E2结合框发挥转录激活作用 | 第56-57页 |
| 2.10 MCAO后ZEB1-TG小胶质细胞中转化生长因子水平较野生型小胶质细胞中含量升高 | 第57-58页 |
| 2.11 阻断星形胶质细胞上的转化生长因子-β1受体后ZEB1-TG小鼠卒中后的保护作用消失 | 第58-61页 |
| 3.讨论 | 第61-67页 |
| 全文结论 | 第67-68页 |
| 论文创新点 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-82页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第82-85页 |
| 综述 | 第85-101页 |
| 综述参考文献 | 第92-101页 |
| 致谢 | 第101-102页 |
| 个人简历 | 第102页 |
