| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6页 |
| 第1章 绪论 | 第11-31页 |
| 1.1 哺乳动物中枢神经系统损伤简介 | 第11-14页 |
| 1.1.1 哺乳动物中枢神经系统轴突几乎不可以再生 | 第11-12页 |
| 1.1.2 哺乳动物中枢神经系统损伤的治疗策略 | 第12-14页 |
| 1.2 鱼类中枢神经系统很强的再生能力 | 第14-18页 |
| 1.2.1 鱼类中枢神经系统是否存在再生抑制因子 | 第16-17页 |
| 1.2.2 鱼类中枢神经系统是否存在再生抑制因子的阻断因素 | 第17-18页 |
| 1.2.3 鱼类中枢神经系统是否存在促进轴突再生的因子 | 第18页 |
| 1.3 调节鱼类轴突再生的内在通路 | 第18-22页 |
| 1.3.1 轴突再生的生理调节 | 第19-20页 |
| 1.3.2 调节内在的轴突生长潜能的分子和信号通路是保守的 | 第20-22页 |
| 1.3.3 鉴定调节轴突生长潜能的新分子 | 第22页 |
| 1.4 轴突再生期间的动态细胞行为 | 第22-25页 |
| 1.4.1 吞噬性的细胞清除轴突变性后的碎片 | 第23页 |
| 1.4.2 桥接胶质细胞促进轴突再生 | 第23-24页 |
| 1.4.3 中枢神经系统损伤后的胶质细胞行为观察亟待补充 | 第24-25页 |
| 1.5 中枢神经系统再生轴突的再髓鞘化 | 第25-26页 |
| 1.6 轴突再生后的突触重建和功能恢复 | 第26-29页 |
| 1.6.1 鱼类中枢神经系统的损伤后的功能恢复 | 第26-28页 |
| 1.6.2 轴突再生后的突触重建 | 第28-29页 |
| 1.6.3 突触重建的活体成像观察 | 第29页 |
| 1.7 斑马鱼幼鱼模型在中枢神经系统再生研究中的优势 | 第29-31页 |
| 第2章 实验材料与方法 | 第31-49页 |
| 2.1 实验动物的品系与饲养 | 第31-33页 |
| 2.1.1 斑马鱼的品系 | 第31页 |
| 2.1.2 斑马鱼的饲养 | 第31页 |
| 2.1.3 实验用斑马鱼幼鱼饲养 | 第31-32页 |
| 2.1.4 草履虫的养殖 | 第32页 |
| 2.1.5 丰年虾的孵化 | 第32页 |
| 2.1.6 胚胎培养液的配制 | 第32页 |
| 2.1.7 麻醉剂的配制 | 第32-33页 |
| 2.1.8 斑马鱼色素抑制剂的配制 | 第33页 |
| 2.2 实验方法 | 第33-46页 |
| 2.2.1 小量抽提质粒DNA | 第33-34页 |
| 2.2.2 质粒构建 | 第34-39页 |
| 2.2.3 显微注射 | 第39-40页 |
| 2.2.4 单个髓鞘信号的筛选 | 第40页 |
| 2.2.5 单细胞电转 | 第40-42页 |
| 2.2.6 毛特纳细胞轴突的双光子激光损伤 | 第42-43页 |
| 2.2.7 激光共聚焦成像 | 第43-44页 |
| 2.2.8 诺考达唑的药理学处理 | 第44-45页 |
| 2.2.9 数据处理和分析 | 第45-46页 |
| 2.3 常用试剂和仪器 | 第46-49页 |
| 第3章 实验结果 | 第49-61页 |
| 3.1 双光子激光切断斑马鱼幼鱼毛特纳细胞的轴突 | 第49-50页 |
| 3.2 双光子轴切后毛特纳细胞轴突的变性 | 第50-52页 |
| 3.3 双光子轴切后毛特纳细胞具有很强的轴突再生能力 | 第52-53页 |
| 3.4 髓鞘碎片在轴突再生过程中并没有被清除 | 第53-55页 |
| 3.5 再生出的毛特纳细胞轴突被髓鞘重新包裹 | 第55-56页 |
| 3.6 毛特纳细胞轴突再生过程中的突触重建 | 第56-58页 |
| 3.7 诺考达唑的给药处理完全抑制毛特纳细胞轴突再生 | 第58-61页 |
| 第4章 实验结果讨论 | 第61-65页 |
| 第5章 总结和展望 | 第65-67页 |
| 5.1 总结 | 第65页 |
| 5.2 展望 | 第65-67页 |
| 参考文献 | 第67-85页 |
| 致谢 | 第85-87页 |
| 在读期间发表的学术论文以及所获的奖项 | 第87-88页 |
| 个人简历 | 第88页 |
