| 摘要 | 第6-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 英文缩略表 | 第13-14页 |
| 第一章 引言 | 第14-25页 |
| 1.1 高等植物开花调控途径概述 | 第14页 |
| 1.2 植物开花抑制基因研究进展 | 第14-20页 |
| 1.2.1 光周期途径中的开花抑制基因 | 第14-17页 |
| 1.2.2 春化途径中的开花抑制基因 | 第17页 |
| 1.2.3 年龄途径中的开花抑制基因 | 第17页 |
| 1.2.4 温度变化感知途径中的开花抑制基因 | 第17-18页 |
| 1.2.5 自主途径中的开花抑制基因 | 第18-19页 |
| 1.2.6 糖信号途径中的开花抑制基因 | 第19页 |
| 1.2.7 赤霉素途径中的开花抑制基因 | 第19页 |
| 1.2.8 FT基因的功能分化 | 第19-20页 |
| 1.3 大豆开花调控基因的研究进展 | 第20-23页 |
| 1.3.1 生育期主效基因 | 第20-21页 |
| 1.3.2 大豆FT同源基因 | 第21页 |
| 1.3.3 大豆其它开花调控基因 | 第21-22页 |
| 1.3.4 大豆开花调控基因间的关系 | 第22-23页 |
| 1.4 本研究的目的和意义 | 第23-25页 |
| 第二章 大豆FT同源基因在大豆开花诱导及逆转过程中表达模式的比较 | 第25-31页 |
| 2.1 实验材料 | 第25页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第25页 |
| 2.1.2 试剂耗材 | 第25页 |
| 2.2 实验方法 | 第25-28页 |
| 2.2.1 材料处理与取样 | 第25页 |
| 2.2.2 Trizol法提取样品RNA | 第25-26页 |
| 2.2.3 实时荧光定量PCR | 第26-28页 |
| 2.3 结果与分析 | 第28-29页 |
| 2.3.1 不同光周期条件下大豆的开花表型 | 第28-29页 |
| 2.3.2 大豆FT同源基因在不同光照条件下的表达 | 第29页 |
| 2.4 讨论 | 第29-31页 |
| 第三章 GmFT1a的克隆和表达分析 | 第31-69页 |
| 3.1 实验材料 | 第31-33页 |
| 3.1.1 植物材料 | 第31-32页 |
| 3.1.2 菌种及质粒 | 第32页 |
| 3.1.3 试剂耗材 | 第32-33页 |
| 3.1.4 相关培养基及抗生素的配置 | 第33页 |
| 3.1.5 试验仪器 | 第33页 |
| 3.2 实验方法 | 第33-42页 |
| 3.2.1 GmFT1a的克隆 | 第33-34页 |
| 3.2.2 GmFT1a的生物信息学分析 | 第34页 |
| 3.2.3 p16318-GmFT1a载体的构建 | 第34-35页 |
| 3.2.4 GmFT1a在洋葱表皮细胞的亚细胞定位 | 第35页 |
| 3.2.5 拟南芥原生质体的制备和pl6318-GmFT1a的转化 | 第35-37页 |
| 3.2.6 GmFT1a表达量的检测 | 第37-38页 |
| 3.2.7 GmFT1a上游启动子序列的组织特异性检测 | 第38-40页 |
| 3.2.8 双荧光素酶检测 | 第40-42页 |
| 3.3 结果与分析 | 第42-67页 |
| 3.3.1 GmFT1a的克隆和序列分析 | 第42-46页 |
| 3.3.2 GmFT1a的亚细胞定位 | 第46-49页 |
| 3.3.3 GmFT1a在长日条件下表达量较高 | 第49-53页 |
| 3.3.4 GmFT1a在维管组织中表达量较高 | 第53-55页 |
| 3.3.5 晚熟品种自贡冬豆和早熟品种黑河27中GmFT1a表达存在明显差异 | 第55-56页 |
| 3.3.6 自贡冬豆中GmFT1a与E1的表达模式相似 | 第56-57页 |
| 3.3.7 GmFT1a在不同生育期组品种中表达模式的比较 | 第57-60页 |
| 3.3.8 GmFT1a在不同近等基因系中的表达差异 | 第60-63页 |
| 3.3.9 E1过表达材料中GmFT1a的表达量升高 | 第63-64页 |
| 3.3.10 在E1存在的条件下GmFT1a启动子驱动的荧光素酶活性升高 | 第64-67页 |
| 3.4 讨论 | 第67-69页 |
| 3.4.1 GmFT1a是长日诱导型基因 | 第67-68页 |
| 3.4.2 GmFT1a可能与GmFT2a/GmFT5a具有相反的功能 | 第68-69页 |
| 第四章 过量表达GmFT1a对大豆开花和成熟的影响 | 第69-95页 |
| 4.1 实验材料 | 第69-71页 |
| 4.1.1 植物材料 | 第69页 |
| 4.1.2 表达载体和菌株 | 第69页 |
| 4.1.3 大豆遗传转化相关培养基 | 第69页 |
| 4.1.4 仪器设备 | 第69-71页 |
| 4.2 实验方法 | 第71-75页 |
| 4.2.1 GmFT1a过量表达载体pTF101.1-GmFT1a的构建 | 第71-72页 |
| 4.2.2 pTF101.1-GmFT1a的电击转化 | 第72页 |
| 4.2.3 大豆子叶节转化及再生苗的鉴定 | 第72-73页 |
| 4.2.4 表型统计和数据分析 | 第73页 |
| 4.2.5 大豆发状根转化过程及表型统计 | 第73-74页 |
| 4.2.6 酵母双杂分析 | 第74-75页 |
| 4.3 结果与分析 | 第75-92页 |
| 4.3.1 Jack品种中GmFT1a和GmFT2a/GmFT5a的表达情况 | 第75-76页 |
| 4.3.2 GmFT1a过量表达载体的构建 | 第76-77页 |
| 4.3.3 GmFT1a在大豆全株转化系统中的功能分析 | 第77-86页 |
| 4.3.4 GmFT1a在发状根系统中的功能分析 | 第86-89页 |
| 4.3.5 GmFT1a与AtFD的相互作用 | 第89-92页 |
| 4.4 讨论 | 第92-95页 |
| 4.4.1 GmFT1a对开花和成熟的抑制作用证明大豆中的FT功能存在分化 | 第92页 |
| 4.4.2 大豆FT基因调控开花的跷跷板模型 | 第92-93页 |
| 4.4.3 GmFT1a运动性的初步探讨 | 第93-95页 |
| 第五章 转GmFT1a大豆转录组分析 | 第95-112页 |
| 5.1 材料与方法 | 第95-98页 |
| 5.1.1 材料种植与取样 | 第95页 |
| 5.1.2 RNA的提取和cDNA文库的构建 | 第95页 |
| 5.1.3 文库检测及测序 | 第95页 |
| 5.1.4 转录组数据分析 | 第95-98页 |
| 5.2 结果与分析 | 第98-110页 |
| 5.2.1 测序数据统计及测序质量评估 | 第98-99页 |
| 5.2.2 样品相关性检查 | 第99页 |
| 5.2.3 各转化株系中的差异基因数目比较 | 第99-101页 |
| 5.2.4 差异基因GO富集 | 第101-102页 |
| 5.2.5 与开花相关的差异基因 | 第102-108页 |
| 5.2.6 与衰老及成熟相关的差异基因 | 第108页 |
| 5.2.7 与激素和相关的差异基因 | 第108-109页 |
| 5.2.8 差异基因表达量的qRT-PCR验证 | 第109-110页 |
| 5.3 讨论 | 第110-112页 |
| 第六章 全文结论 | 第112-113页 |
| 参考文献 | 第113-122页 |
| 附录 | 第122-123页 |
| 致谢 | 第123-125页 |
| 作者简历 | 第125-126页 |
