| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 目录 | 第8-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-21页 |
| 1.1 高脂膳食与肠道氧化应激 | 第12-13页 |
| 1.2 高脂膳食与肠道菌群 | 第13-18页 |
| 1.2.1 肠道菌群结构组成 | 第13页 |
| 1.2.2 肠道菌群与机体代谢 | 第13-15页 |
| 1.2.3 高脂膳食对肠道菌群的影响 | 第15-16页 |
| 1.2.4 益生菌对机体健康的影响 | 第16页 |
| 1.2.5 研究肠道菌群的分子生物学技术 | 第16-18页 |
| 1.3 氧化应激与肠道菌群 | 第18-19页 |
| 1.3.1 氧化应激对肠道菌群的影响 | 第18-19页 |
| 1.3.2 肠道菌群对氧化应激的耐受性 | 第19页 |
| 1.4 慢性炎症与机体代谢 | 第19-20页 |
| 1.5 本论文的研究背景及研究内容 | 第20-21页 |
| 1.5.1 论文的研究背景 | 第20页 |
| 1.5.2 论文的研究内容 | 第20-21页 |
| 第二章 高脂膳食及硫辛酸干预对肠道氧化应激及菌群的影响 | 第21-35页 |
| 2.1 前言 | 第21页 |
| 2.2 实验材料 | 第21-23页 |
| 2.2.1 试验主要材料 | 第21-22页 |
| 2.2.2 试验主要试剂 | 第22页 |
| 2.2.3 主要溶液的配置 | 第22页 |
| 2.2.4 试验主要设备 | 第22-23页 |
| 2.3 实验方法 | 第23-26页 |
| 2.3.1 体外评价氧化应激对菌群的影响 | 第23页 |
| 2.3.2 动物喂养及组织样品采集 | 第23页 |
| 2.3.3 组织样品采集 | 第23-24页 |
| 2.3.4 指标测定 | 第24页 |
| 2.3.5 结肠内容物总 DNA 提取 | 第24-25页 |
| 2.3.6 结肠内容物菌群 PCR 扩增 | 第25-26页 |
| 2.3.7 变性梯度凝胶电泳 | 第26页 |
| 2.3.8 基因登录号 | 第26页 |
| 2.3.9 数据分析 | 第26页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第26-34页 |
| 2.4.1 体外评价氧化应激对菌群的影响 | 第26-27页 |
| 2.4.2 高脂膳食及添加硫辛酸对机体健康表型的影响 | 第27-28页 |
| 2.4.3 硫辛酸缓解高脂膳食诱导的氧化应激水平 | 第28-30页 |
| 2.4.4 DGGE 技术及平板计数分析饮食对肠道菌群的影响 | 第30-32页 |
| 2.4.5 氧化应激与肠道菌群的相关性分析 | 第32-34页 |
| 2.5 本章小结 | 第34-35页 |
| 第三章 高脂膳食及白藜芦醇干预对肥胖易感和肥胖抵抗小鼠肠道氧化应激及菌群的影响 | 第35-50页 |
| 3.1 前言 | 第35页 |
| 3.2 实验材料 | 第35-36页 |
| 3.2.1 试验主要材料 | 第35-36页 |
| 3.2.2 试验主要试剂 | 第36页 |
| 3.2.3 主要溶液的配置 | 第36页 |
| 3.2.4 试验主要设备 | 第36页 |
| 3.3 实验方法 | 第36-40页 |
| 3.3.1 动物喂养 | 第36-37页 |
| 3.3.2 组织样品采集 | 第37页 |
| 3.3.3 指标测定 | 第37-40页 |
| 3.3.4 数据分析 | 第40页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第40-49页 |
| 3.4.1 各组间机体健康表型的差异 | 第40-42页 |
| 3.4.2 肥胖易感和肥胖抵抗小鼠肠道氧化应激水平 | 第42-43页 |
| 3.4.3 荧光原位杂交结合流式细胞术分析肠道菌群组成 | 第43-45页 |
| 3.4.4 肠道氧化应激与肠道菌群相关性分析 | 第45-46页 |
| 3.4.5 肥胖易感及肥胖抵抗小鼠肠道炎症水平 | 第46-49页 |
| 3.5 本章小结 | 第49-50页 |
| 第四章 肥胖易感及肥胖抵抗小鼠派伊尔结内生菌群结构的研究 | 第50-67页 |
| 4.1 前言 | 第50页 |
| 4.2 实验材料 | 第50-51页 |
| 4.2.1 实验主要材料 | 第50页 |
| 4.2.2 实验主要试剂 | 第50-51页 |
| 4.2.3 主要溶液的配制 | 第51页 |
| 4.2.4 实验主要设备 | 第51页 |
| 4.3 实验方法 | 第51-54页 |
| 4.3.1 动物喂养及样品采集 | 第51-52页 |
| 4.3.2 454 高通量测序测定派伊尔结内生菌群结构组成 | 第52-53页 |
| 4.3.3 荧光定量 PCR 对派伊尔结内生菌群结构的验证分析 | 第53-54页 |
| 4.3.4 派伊尔结炎症相关基因表达的分析 | 第54页 |
| 4.3.5 数据分析 | 第54页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第54-66页 |
| 4.4.1 高脂膳食对体重、能量摄入及血糖水平的影响 | 第54-56页 |
| 4.4.2 序列有效性、丰度、多样性分析 | 第56-58页 |
| 4.4.3 基于门属水平上派伊尔结内生菌群结构的分析 | 第58-60页 |
| 4.4.4 基于多元统计派伊尔结内生菌群结构的分析 | 第60-63页 |
| 4.4.5 基于荧光定量 PCR 对派伊尔结内生菌群结构的验证分析 | 第63页 |
| 4.4.6 基于荧光定量 PCR 对派伊尔结炎症相关基因表达的分析 | 第63-66页 |
| 4.5 本章小结 | 第66-67页 |
| 第五章 派伊尔结内生乳杆菌及优势菌罗伊乳杆菌的体外分析 | 第67-84页 |
| 5.1 前言 | 第67-68页 |
| 5.2 实验材料 | 第68页 |
| 5.2.1 主要实验材料 | 第68页 |
| 5.2.2 主要实验试剂 | 第68页 |
| 5.2.3 主要溶液配制方法 | 第68页 |
| 5.2.4 实验主要设备 | 第68页 |
| 5.3 实验方法 | 第68-73页 |
| 5.3.1 派伊尔结内生乳杆菌的分离 | 第68-70页 |
| 5.3.2 派伊尔结内生罗伊乳杆菌定量分析 | 第70页 |
| 5.3.3 罗伊乳杆菌抗氧化活性的体外分析 | 第70-71页 |
| 5.3.4 罗伊乳杆菌调节派伊尔结细胞细胞因子水平的体外分析 | 第71-72页 |
| 5.3.5 罗伊乳杆菌 L3 对派伊尔结细胞的保护作用 | 第72-73页 |
| 5.3.6 统计分析 | 第73页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第73-83页 |
| 5.4.1 派伊尔结内生乳杆菌分离结果 | 第73页 |
| 5.4.2 ERIC-PCR 指纹图谱结果 | 第73-76页 |
| 5.4.3 罗伊乳杆菌抗氧化活性的体外分析 | 第76-79页 |
| 5.4.4 罗伊乳杆菌调节派伊尔结细胞细胞因子水平的体外分析 | 第79-81页 |
| 5.4.5 罗伊乳杆菌 L3 对派伊尔结细胞的保护调节 | 第81-83页 |
| 5.5 本章小结 | 第83-84页 |
| 第六章 灌胃两种不同的罗伊乳杆菌对机体代谢的影响 | 第84-100页 |
| 6.1 前言 | 第84页 |
| 6.2 实验材料 | 第84页 |
| 6.2.1 实验主要材料 | 第84页 |
| 6.2.2 主要实验试剂 | 第84页 |
| 6.2.3 主要溶液配制方法 | 第84页 |
| 6.2.4 实验主要设备 | 第84页 |
| 6.3 实验方法 | 第84-86页 |
| 6.3.1 罗伊乳杆菌的活化与培养 | 第84-85页 |
| 6.3.2 动物实验 | 第85-86页 |
| 6.4 结果与讨论 | 第86-99页 |
| 6.4.1 灌胃两种罗伊乳杆菌对机体健康表型的影响 | 第86-89页 |
| 6.4.2 两种罗伊乳杆菌对氧气消耗量、呼吸交换率、能量摄入及活动的影响 | 第89-93页 |
| 6.4.3 灌胃两种罗伊乳杆菌对内毒素的影响 | 第93-94页 |
| 6.4.4 灌胃两种罗伊乳杆菌对细胞因子的影响 | 第94-96页 |
| 6.4.5 灌胃两种罗伊乳杆菌对肝脏组织的影响 | 第96-97页 |
| 6.4.6 灌胃两种罗伊乳杆菌对脂肪组织的影响 | 第97-99页 |
| 6.5 本章小结 | 第99-100页 |
| 主要结论与展望 | 第100-102页 |
| 论文主要结论 | 第100-101页 |
| 展望 | 第101-102页 |
| 论文主要创新点 | 第102-103页 |
| 致谢 | 第103-104页 |
| 参考文献 | 第104-119页 |
| 附录 | 第119-120页 |
| 作者在攻读博士学位期间发表的论文 | 第120页 |
