| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 第1章 综述 | 第10-18页 |
| 1.1 模式植物简介 | 第10-11页 |
| 1.1.1 拟南芥 | 第10-11页 |
| 1.1.2 杨树 | 第11页 |
| 1.2 CLE基因家族的分子特征与分类 | 第11-13页 |
| 1.2.1 CLE基因家族的分子特征 | 第11-12页 |
| 1.2.2 CLE基因家族的分类 | 第12-13页 |
| 1.3 CLE基因家族的功能 | 第13-16页 |
| 1.3.1 CLE多肽在茎尖分生组织的调控机制 | 第13页 |
| 1.3.2 CLE多肽在根尖分生组织的调控机制 | 第13-14页 |
| 1.3.3 CLE多肽在维管(原)形成层分生组织的调控机制 | 第14-16页 |
| 1.4 CLE基因家族的研究进展 | 第16页 |
| 1.5 本文研究的目的与意义 | 第16-18页 |
| 第2章 杨树CLE基因家族的生物信息学和组织特异性表达分析 | 第18-36页 |
| 2.1 材料、试剂与仪器 | 第18页 |
| 2.1.1 材料 | 第18页 |
| 2.1.2 试剂 | 第18页 |
| 2.1.3 设备 | 第18页 |
| 2.2 实验方法 | 第18-25页 |
| 2.2.1 杨树CLE基因家族的检索 | 第18-19页 |
| 2.2.2 杨树CLE基因家族系统发育进化树的构建 | 第19-20页 |
| 2.2.3 TotalRNA的提取 | 第20-21页 |
| 2.2.4 cDNA的合成 | 第21-22页 |
| 2.2.5 荧光实时定量引物设计与PCR | 第22-25页 |
| 2.3 结果与分析 | 第25-36页 |
| 2.3.1 杨树CLE基因家族的生物信息学检索分析 | 第25-31页 |
| 2.3.2 杨树CLE基因组织特异性表达分析 | 第31-36页 |
| 第3章 外源CLE多肽激素对分生组织调控功能的鉴定与分析 | 第36-48页 |
| 3.1 材料、试剂与设备 | 第36页 |
| 3.1.1 材料 | 第36页 |
| 3.1.2 试剂 | 第36页 |
| 3.1.3 设备 | 第36页 |
| 3.2 实验方法 | 第36-39页 |
| 3.2.1 种子消毒与春化 | 第36-37页 |
| 3.2.2 CLE多肽激素培养基的配制 | 第37页 |
| 3.2.3 植物形态学的观察 | 第37-38页 |
| 3.2.4 GUS组织化学染色 | 第38-39页 |
| 3.2.5 植物组织切片 | 第39页 |
| 3.3 结果与分析 | 第39-48页 |
| 3.3.1 多肽浓度分析 | 第39-41页 |
| 3.3.2 杨树CLE多肽对根尖分生组织调控分析 | 第41-44页 |
| 3.3.3 杨树CLE多肽对茎尖分生组织调控分析 | 第44-46页 |
| 3.3.4 杨树CLE多肽对维管分生组织调控分析 | 第46-48页 |
| 第4章 过表达杨树CLE基因对分生组织调控功能的鉴定与分析 | 第48-74页 |
| 4.1 材料、试剂与设备 | 第48页 |
| 4.1.1 材料 | 第48页 |
| 4.1.2 试剂 | 第48页 |
| 4.1.3 仪器 | 第48页 |
| 4.2 实验方法 | 第48-60页 |
| 4.2.1 基因组DNA的提取 | 第48-50页 |
| 4.2.2 杨树CLE基因引物的设计和扩增 | 第50-51页 |
| 4.2.3 pJET1.2-PtCLE克隆载体的构建 | 第51-54页 |
| 4.2.4 pBI121-PtCLE表达载体的构建 | 第54-56页 |
| 4.2.5 农杆菌介导的遗传转化 | 第56-57页 |
| 4.2.6 转基因拟南芥的筛选 | 第57-59页 |
| 4.2.7 转基因拟南芥形态学观察 | 第59-60页 |
| 4.3 结果与分析 | 第60-74页 |
| 4.3.1 杨树CLE基因的克隆与遗传转化分析 | 第60-65页 |
| 4.3.2 过表达杨树CLE基因对分生组织调控的功能的鉴定与分析 | 第65-74页 |
| 第5章 全文结论、讨论与展望 | 第74-78页 |
| 5.1 结论 | 第74-75页 |
| 5.2 讨论 | 第75-77页 |
| 5.3 展望 | 第77-78页 |
| 参考文献 | 第78-86页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第86-88页 |
| 致谢 | 第88-89页 |
