| 致谢 | 第7-8页 |
| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 目录 | 第12-15页 |
| 縮略词表 | 第15-17页 |
| 第一章 文献综述 | 第17-37页 |
| 1 引言 | 第17-18页 |
| 2 MSCs的特征与鉴定 | 第18-20页 |
| 2.1 MSCs的形态特征 | 第18页 |
| 2.2 MSCs的鉴定标记 | 第18-20页 |
| 3 MSCs的分化 | 第20-27页 |
| 3.1 MSCs的成骨分化 | 第20-24页 |
| 3.1.1 MSCs成骨分化的背景 | 第20页 |
| 3.1.2 MSCs成骨分化的形态学及分化标志物 | 第20-21页 |
| 3.1.3 MSCs成骨分化方法 | 第21-24页 |
| 3.2 MSCs的成脂分化 | 第24-27页 |
| 3.2.1 MSCs成脂分化的背景 | 第24-25页 |
| 3.2.2 MSCs成脂分化的形态学及分化标志物 | 第25页 |
| 3.2.3 MSCs成脂分化方法 | 第25-27页 |
| 4 本章小结 | 第27-29页 |
| 参考文献 | 第29-37页 |
| 第二章 体外BMSCs来源的成骨样细胞的去分化 | 第37-52页 |
| 1 引言 | 第37-38页 |
| 2 材料与方法 | 第38-41页 |
| 2.1 材料 | 第38-40页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第38页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第38-39页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第39-40页 |
| 2.2 方法 | 第40-41页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第40页 |
| 2.2.2 MTT检测 | 第40页 |
| 2.2.3 总蛋白量测定 | 第40-41页 |
| 2.2.4 碱性磷酸酶染色和活性测定 | 第41页 |
| 2.2.5 酶联免疫吸附实验(ELISA) | 第41页 |
| 2.2.6 Vonkassa染色和定量 | 第41页 |
| 2.2.7 数据统计 | 第41页 |
| 3 结果 | 第41-47页 |
| 3.1 BMSCs的成骨分化特征 | 第41-42页 |
| 3.2 失诱导后成骨样细胞增殖的恢复 | 第42-43页 |
| 3.3 失诱导后成骨样细胞的去分化现象 | 第43-47页 |
| 4 讨论 | 第47-48页 |
| 5 小结 | 第48-50页 |
| 参考文献 | 第50-52页 |
| 第三章 几种抗氧化剂对BMSCs的自我更新与定向分化的调控作用 | 第52-87页 |
| 1 引言 | 第52-54页 |
| 2 材料与方法 | 第54-59页 |
| 2.1 材料 | 第54-56页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第54页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第54-56页 |
| 2.2 方法 | 第56-59页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第56-57页 |
| 2.2.2 MTT检测 | 第57页 |
| 2.2.3 总蛋白含量测定 | 第57页 |
| 2.2.4 CFU-F统计和细胞倍增时间 | 第57页 |
| 2.2.5 碱性磷酸酶染色与活性测定 | 第57页 |
| 2.2.6 油红O染色 | 第57页 |
| 2.2.7 矿质沉积水平检测 | 第57-58页 |
| 2.2.8 β-半乳糖苷酶染色和定量 | 第58页 |
| 2.2.9 流式细胞术分析 | 第58页 |
| 2.2.10 RNA提取与荧光定量RT-PCR | 第58页 |
| 2.2.11 统计 | 第58-59页 |
| 3 结果 | 第59-74页 |
| 3.1 牛磺酸延缓BMSCs的体外复制性衰老 | 第59-66页 |
| 3.1.1 牛磺酸促进BMSCs的CFU-F形成和细胞增殖 | 第59-61页 |
| 3.1.2 牛磺酸降低衰老相关β-半乳糖苷酶活性 | 第61-62页 |
| 3.1.3 BMSCs表面CD分子表达情况 | 第62-64页 |
| 3.1.4 牛磺酸延缓BMSCs分化潜能的降低 | 第64-66页 |
| 3.2 成骨诱导剂维生素C单体对BMSCs的成脂诱导作用 | 第66-69页 |
| 3.2.1 胞质的脂滴积累 | 第66-68页 |
| 3.2.2 成脂分化标志物的表达 | 第68-69页 |
| 3.3 N-乙酰半胱氨酸通过上调Wnt5a和下调PPARG表达促进BMSCs成骨分化且抑制成脂分化 | 第69-74页 |
| 3.3.1 NAC促进BMSCs增殖 | 第69页 |
| 3.3.2 NAC促进BMSCs的成骨分化 | 第69-72页 |
| 3.3.3 NAC抑制BMSCs的成脂分化 | 第72-74页 |
| 4 讨论 | 第74-81页 |
| 4.1 牛磺酸延缓BMSCs的体外复制性衰老 | 第74-77页 |
| 4.2 维生素C通过提高PPAR-γ表达促进BMSCs成脂分化 | 第77-78页 |
| 4.3 N-乙酰半胱氨酸通过上调Wnt5a和下调PPARG表达对BMSCs分化方向的逆转作用 | 第78-81页 |
| 5 本章小结 | 第81-82页 |
| 参考文献 | 第82-87页 |
| 第四章 羟基磷灰石条件培养基对BMSCs的成骨诱导作用 | 第87-98页 |
| 1 引言 | 第87-88页 |
| 2 材料与方法 | 第88-89页 |
| 2.1 材料 | 第88-89页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第88页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第88-89页 |
| 2.2 方法 | 第89-91页 |
| 2.2.1 HAP条件培养基和涂层的制备 | 第89页 |
| 2.2.2 细胞培养 | 第89页 |
| 2.2.3 碱性磷酸酶活性测定 | 第89页 |
| 2.2.4 吖啶橙染色 | 第89-90页 |
| 2.2.5 RNA提取与RT-PCR | 第90-91页 |
| 3 结果 | 第91-94页 |
| 3.1 HAP颗粒和HAP涂层的特性 | 第91-92页 |
| 3.2 BMSCs的增殖 | 第92页 |
| 3.3 BMSCs的成骨分化 | 第92-94页 |
| 4 讨论 | 第94-95页 |
| 5 小结 | 第95-96页 |
| 参考文献 | 第96-98页 |
| 第五章 纳米生物活性玻璃涂膜对BMSCs的骨诱导作用 | 第98-117页 |
| 1 引言 | 第98-99页 |
| 2 材料与方法 | 第99-103页 |
| 2.1 材料 | 第99-100页 |
| 2.2 方法 | 第100-103页 |
| 2.2.1 BG与nBG玻璃溶胶的合成 | 第100-101页 |
| 2.2.2 BGF与nBGF的制备 | 第101页 |
| 2.2.3 BGF与nBGF的特征鉴定 | 第101页 |
| 2.2.4 BGF与nBGF的生物活性 | 第101-102页 |
| 2.2.5 BGF与nBGF的细胞学效应 | 第102-103页 |
| 3 结果与讨论 | 第103-113页 |
| 3.1 BGF/nBGF的特征与鉴定 | 第103-107页 |
| 3.3 BGF/nBGF的生物活性 | 第107-109页 |
| 3.4 BMSCs在BGF/nBGF上的贴壁能力与增殖活性 | 第109-111页 |
| 3.5 BGF/nBGF对BMSCs的骨诱导性 | 第111-113页 |
| 4 本章小结 | 第113-115页 |
| 参考文献 | 第115-117页 |
| 作者简历 | 第117-118页 |
| 教育背景 | 第117页 |
| 论文发表 | 第117-118页 |
