| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7页 |
| 1 前言 | 第8-12页 |
| 1.1 磷脂酶D结构和生化特性 | 第9页 |
| 1.2 植物PLD在响应高渗透中的作用 | 第9-10页 |
| 1.3 PLD在植物营养利用中的作用 | 第10-11页 |
| 1.4 本研究的目的与意义 | 第11-12页 |
| 2 材料与方法 | 第12-18页 |
| 2.1 实验材料 | 第12-15页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第12页 |
| 2.1.2 菌株及质粒 | 第12页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第12页 |
| 2.1.4 所用引物 | 第12-15页 |
| 2.1.5 常用仪器 | 第15页 |
| 2.2 实验方法 | 第15-18页 |
| 2.2.1 突变体分离鉴定 | 第15页 |
| 2.2.2 CTAB法提取水稻基因组总DNA | 第15-16页 |
| 2.2.3 水稻总RNA的抽提 | 第16页 |
| 2.2.4 RNA的抽提的反转录 | 第16页 |
| 2.2.5 盐胁迫实验 | 第16页 |
| 2.2.6 大肠杆菌原核表达载体的构建与鉴定 | 第16-17页 |
| 2.2.7 大肠杆菌原核重组蛋白表达和提取 | 第17-18页 |
| 3 结果与分析 | 第18-27页 |
| 3.1 水稻PLD同源蛋白分析 | 第18-20页 |
| 3.2 水稻PLD家族基因突变体的分离 | 第20-21页 |
| 3.3 部分纯合突变体的基因表达量鉴定 | 第21-22页 |
| 3.4 PLD家族基因在盐胁迫条件下的表达量分析 | 第22-23页 |
| 3.5 PLDβ2的缺失突变导致株高和种子长度减少 | 第23-24页 |
| 3.6 PLDβ2参与盐胁迫反应过程 | 第24-26页 |
| 3.7 水稻PLDδ2克隆与原核蛋白的表达 | 第26-27页 |
| 4 讨论 | 第27-29页 |
| 参考文献 | 第29-32页 |
| 附录 | 第32-35页 |
| 致谢 | 第35页 |