| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第13-24页 |
| 1.1 HMF概述 | 第13-15页 |
| 1.1.1 HMF简介 | 第13-14页 |
| 1.1.2 HMF的合成 | 第14-15页 |
| 1.2 BHMF概述 | 第15-19页 |
| 1.2.1 BHMF简介 | 第15-16页 |
| 1.2.2 化学法催化HMF还原合成BHMF的研究 | 第16-17页 |
| 1.2.3 生物脱毒中全细胞催化HMF还原的研究 | 第17-19页 |
| 1.3 细胞固定化 | 第19-21页 |
| 1.3.1 细胞固定化概述 | 第19页 |
| 1.3.2 细胞固定化的方法 | 第19-20页 |
| 1.3.3 细胞固定化载体材料性能要求 | 第20-21页 |
| 1.4 MOFs材料 | 第21-22页 |
| 1.4.1 MOFs材料概述 | 第21页 |
| 1.4.2 MOFs材料作为生物催化剂固定化载体的应用 | 第21-22页 |
| 1.5 本课题的研究意义与主要内容 | 第22-24页 |
| 第二章 全细胞催化HMF选择性还原合成BHMF的研究 | 第24-50页 |
| 2.1 实验材料 | 第25-26页 |
| 2.1.1 微生物菌株 | 第25页 |
| 2.1.2 培养基 | 第25页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第25-26页 |
| 2.2 主要仪器设备 | 第26页 |
| 2.3 实验方法 | 第26-32页 |
| 2.3.1 微生物的培养 | 第26页 |
| 2.3.2 微生物的分子生物学鉴定 | 第26-27页 |
| 2.3.3 高效液相色谱（HPLC）分析条件 | 第27页 |
| 2.3.4 亚甲基蓝染色方法 | 第27页 |
| 2.3.5 反应初速度、选择性、转化率、产率及细胞成活率的确定 | 第27-28页 |
| 2.3.6 不同辅底物对全细胞催化HMF选择性还原的影响 | 第28页 |
| 2.3.7 葡萄糖浓度对全细胞催化HMF选择性还原的影响 | 第28-29页 |
| 2.3.8 氮源及矿物盐对全细胞催化HMF选择性还原的影响 | 第29页 |
| 2.3.9 缓冲液pH值对全细胞催化HMF选择性还原的影响 | 第29页 |
| 2.3.10 细胞浓度对全细胞催化HMF选择性还原的影响 | 第29-30页 |
| 2.3.11 反应温度对全细胞催化HMF选择性还原的影响 | 第30页 |
| 2.3.12 底物抑制及毒性的研究 | 第30页 |
| 2.3.13 全细胞催化HMF选择性还原葡萄糖浓度变化的研究 | 第30-31页 |
| 2.3.14 高浓度葡萄糖时全细胞催化HMF选择性还原的研究 | 第31页 |
| 2.3.15 产物抑制及毒性的研究 | 第31页 |
| 2.3.17 底物分批流加合成BHMF的研究 | 第31-32页 |
| 2.3.18 M. guilliermondii SC1103细胞催化糠醛及 5-甲基糠醛还原的研究 | 第32页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第32-49页 |
| 2.4.1 微生物菌株的鉴定 | 第32-34页 |
| 2.4.2 不同辅底物对全细胞催化HMF选择性还原的影响 | 第34-35页 |
| 2.4.3 葡萄糖浓度对全细胞催化HMF选择性还原的影响 | 第35-36页 |
| 2.4.4 氮源及矿物盐对全细胞催化HMF选择性还原的影响 | 第36-37页 |
| 2.4.5 缓冲液pH值对全细胞催化HMF选择性还原的影响 | 第37-38页 |
| 2.4.6 细胞浓度对全细胞催化HMF选择性还原的影响 | 第38-39页 |
| 2.4.7 反应温度对全细胞催化HMF选择性还原的影响 | 第39-41页 |
| 2.4.8 底物抑制及毒性研究 | 第41-42页 |
| 2.4.9 全细胞催化HMF选择性还原过程葡萄糖浓度变化 | 第42-43页 |
| 2.4.10 高浓度葡萄糖时全细胞催化HMF选择性还原的研究 | 第43-46页 |
| 2.4.11 产物抑制及毒性的研究 | 第46-47页 |
| 2.4.12 基于底物分批流加策略的BHMF合成 | 第47-48页 |
| 2.4.13 M. guilliermondii SC1103细胞催化糠醛及 5-甲基糠醛还原的研究 | 第48-49页 |
| 2.5 本章小结 | 第49-50页 |
| 第三章 MOFs材料固定化M. guilliermondii SC1103细胞的研究 | 第50-71页 |
| 3.1 实验材料 | 第51页 |
| 3.1.1 微生物菌株 | 第51页 |
| 3.1.2 培养基 | 第51页 |
| 3.1.3 实验试剂 | 第51页 |
| 3.2 实验仪器设备 | 第51页 |
| 3.3 实验方法 | 第51-56页 |
| 3.3.1 M. guilliermondii SC1103细胞的培养 | 第51-52页 |
| 3.3.2 高效液相色谱（HPLC）分析条件 | 第52页 |
| 3.3.3 ZIF-8 固定化M. guilliermondii SC1103细胞的方法 | 第52页 |
| 3.3.4 海藻酸盐固定化M. guilliermondii SC1103细胞的方法 | 第52页 |
| 3.3.5 固定化细胞催化活性的研究 | 第52页 |
| 3.3.6 固定化细胞包封率的测定 | 第52-53页 |
| 3.3.7 固定化细胞底物耐受性的研究 | 第53页 |
| 3.3.8 固定化细胞热稳定性的研究 | 第53-54页 |
| 3.3.9 固定化细胞有机溶剂耐受性的研究 | 第54页 |
| 3.3.10 固定化细胞贮藏稳定性的研究 | 第54页 |
| 3.3.11 固定化细胞操作稳定性的研究 | 第54-55页 |
| 3.3.12 MOF材料ZIF-8 合成方法 | 第55页 |
| 3.3.13 MOF材料Fe-BTC固定化M. guilliermondii SC1103细胞的方法 | 第55页 |
| 3.3.14 Fe-BTC固定化M. guilliermondii SC1103细胞催化活性的研究 | 第55页 |
| 3.3.15 反应初速度、选择性、转化率、产率、包封率及相对活性的确定 | 第55-56页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第56-69页 |
| 3.4.1 不同载体材料固定化细胞的研究 | 第56-57页 |
| 3.4.2 固定化细胞包封率的研究 | 第57-58页 |
| 3.4.3 固定化细胞扫描电镜分析 | 第58页 |
| 3.4.4 固定化细胞XRD分析 | 第58-61页 |
| 3.4.5 固定化细胞底物耐受性的研究 | 第61-62页 |
| 3.4.6 固定化细胞热稳定性的研究 | 第62-63页 |
| 3.4.7 固定化细胞有机溶剂耐受性的研究 | 第63-64页 |
| 3.4.8 固定化细胞贮藏稳定性的研究 | 第64-66页 |
| 3.4.9 固定化细胞操作稳定性研究 | 第66-68页 |
| 3.4.10 MOF材料Fe-BTC固定化M. guilliermondii SC1103细胞的研究 | 第68-69页 |
| 3.5 本章小结 | 第69-71页 |
| 结论与展望 | 第71-73页 |
| 参考文献 | 第73-83页 |
| 附录一 校正曲线 | 第83-88页 |
| 附录二 部分液相色谱图 | 第88-89页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第89-90页 |
| 致谢 | 第90-91页 |
| 附件 | 第91页 |
