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季也蒙毕赤酵母SC1103细胞催化5-羟甲基糠醛选择性还原的研究

摘要第5-7页
ABSTRACT第7-8页
第一章 绪论第13-24页
    1.1 HMF概述第13-15页
        1.1.1 HMF简介第13-14页
        1.1.2 HMF的合成第14-15页
    1.2 BHMF概述第15-19页
        1.2.1 BHMF简介第15-16页
        1.2.2 化学法催化HMF还原合成BHMF的研究第16-17页
        1.2.3 生物脱毒中全细胞催化HMF还原的研究第17-19页
    1.3 细胞固定化第19-21页
        1.3.1 细胞固定化概述第19页
        1.3.2 细胞固定化的方法第19-20页
        1.3.3 细胞固定化载体材料性能要求第20-21页
    1.4 MOFs材料第21-22页
        1.4.1 MOFs材料概述第21页
        1.4.2 MOFs材料作为生物催化剂固定化载体的应用第21-22页
    1.5 本课题的研究意义与主要内容第22-24页
第二章 全细胞催化HMF选择性还原合成BHMF的研究第24-50页
    2.1 实验材料第25-26页
        2.1.1 微生物菌株第25页
        2.1.2 培养基第25页
        2.1.3 主要试剂第25-26页
    2.2 主要仪器设备第26页
    2.3 实验方法第26-32页
        2.3.1 微生物的培养第26页
        2.3.2 微生物的分子生物学鉴定第26-27页
        2.3.3 高效液相色谱(HPLC)分析条件第27页
        2.3.4 亚甲基蓝染色方法第27页
        2.3.5 反应初速度、选择性、转化率、产率及细胞成活率的确定第27-28页
        2.3.6 不同辅底物对全细胞催化HMF选择性还原的影响第28页
        2.3.7 葡萄糖浓度对全细胞催化HMF选择性还原的影响第28-29页
        2.3.8 氮源及矿物盐对全细胞催化HMF选择性还原的影响第29页
        2.3.9 缓冲液pH值对全细胞催化HMF选择性还原的影响第29页
        2.3.10 细胞浓度对全细胞催化HMF选择性还原的影响第29-30页
        2.3.11 反应温度对全细胞催化HMF选择性还原的影响第30页
        2.3.12 底物抑制及毒性的研究第30页
        2.3.13 全细胞催化HMF选择性还原葡萄糖浓度变化的研究第30-31页
        2.3.14 高浓度葡萄糖时全细胞催化HMF选择性还原的研究第31页
        2.3.15 产物抑制及毒性的研究第31页
        2.3.17 底物分批流加合成BHMF的研究第31-32页
        2.3.18 M. guilliermondii SC1103细胞催化糠醛及 5-甲基糠醛还原的研究第32页
    2.4 结果与讨论第32-49页
        2.4.1 微生物菌株的鉴定第32-34页
        2.4.2 不同辅底物对全细胞催化HMF选择性还原的影响第34-35页
        2.4.3 葡萄糖浓度对全细胞催化HMF选择性还原的影响第35-36页
        2.4.4 氮源及矿物盐对全细胞催化HMF选择性还原的影响第36-37页
        2.4.5 缓冲液pH值对全细胞催化HMF选择性还原的影响第37-38页
        2.4.6 细胞浓度对全细胞催化HMF选择性还原的影响第38-39页
        2.4.7 反应温度对全细胞催化HMF选择性还原的影响第39-41页
        2.4.8 底物抑制及毒性研究第41-42页
        2.4.9 全细胞催化HMF选择性还原过程葡萄糖浓度变化第42-43页
        2.4.10 高浓度葡萄糖时全细胞催化HMF选择性还原的研究第43-46页
        2.4.11 产物抑制及毒性的研究第46-47页
        2.4.12 基于底物分批流加策略的BHMF合成第47-48页
        2.4.13 M. guilliermondii SC1103细胞催化糠醛及 5-甲基糠醛还原的研究第48-49页
    2.5 本章小结第49-50页
第三章 MOFs材料固定化M. guilliermondii SC1103细胞的研究第50-71页
    3.1 实验材料第51页
        3.1.1 微生物菌株第51页
        3.1.2 培养基第51页
        3.1.3 实验试剂第51页
    3.2 实验仪器设备第51页
    3.3 实验方法第51-56页
        3.3.1 M. guilliermondii SC1103细胞的培养第51-52页
        3.3.2 高效液相色谱(HPLC)分析条件第52页
        3.3.3 ZIF-8 固定化M. guilliermondii SC1103细胞的方法第52页
        3.3.4 海藻酸盐固定化M. guilliermondii SC1103细胞的方法第52页
        3.3.5 固定化细胞催化活性的研究第52页
        3.3.6 固定化细胞包封率的测定第52-53页
        3.3.7 固定化细胞底物耐受性的研究第53页
        3.3.8 固定化细胞热稳定性的研究第53-54页
        3.3.9 固定化细胞有机溶剂耐受性的研究第54页
        3.3.10 固定化细胞贮藏稳定性的研究第54页
        3.3.11 固定化细胞操作稳定性的研究第54-55页
        3.3.12 MOF材料ZIF-8 合成方法第55页
        3.3.13 MOF材料Fe-BTC固定化M. guilliermondii SC1103细胞的方法第55页
        3.3.14 Fe-BTC固定化M. guilliermondii SC1103细胞催化活性的研究第55页
        3.3.15 反应初速度、选择性、转化率、产率、包封率及相对活性的确定第55-56页
    3.4 结果与讨论第56-69页
        3.4.1 不同载体材料固定化细胞的研究第56-57页
        3.4.2 固定化细胞包封率的研究第57-58页
        3.4.3 固定化细胞扫描电镜分析第58页
        3.4.4 固定化细胞XRD分析第58-61页
        3.4.5 固定化细胞底物耐受性的研究第61-62页
        3.4.6 固定化细胞热稳定性的研究第62-63页
        3.4.7 固定化细胞有机溶剂耐受性的研究第63-64页
        3.4.8 固定化细胞贮藏稳定性的研究第64-66页
        3.4.9 固定化细胞操作稳定性研究第66-68页
        3.4.10 MOF材料Fe-BTC固定化M. guilliermondii SC1103细胞的研究第68-69页
    3.5 本章小结第69-71页
结论与展望第71-73页
参考文献第73-83页
附录一 校正曲线第83-88页
附录二 部分液相色谱图第88-89页
攻读硕士学位期间取得的研究成果第89-90页
致谢第90-91页
附件第91页

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