摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
第1章 绪论 | 第11-18页 |
1.1 糖尿病的简介 | 第11页 |
1.2 马齿苋的概述 | 第11-12页 |
1.3 黄酮类化合物的研究进展 | 第12-15页 |
1.3.1 黄酮类化合物分类和性质 | 第12页 |
1.3.2 黄酮类化合物构效关系 | 第12-15页 |
1.4 本课题的研究意义及主要内容 | 第15-18页 |
1.4.1 研究意义 | 第15-16页 |
1.4.2 主要内容 | 第16-18页 |
第2章 马齿苋黄酮超声波提取工艺优化及体外试验 | 第18-32页 |
2.1 引言 | 第18页 |
2.2 试验材料及仪器 | 第18-19页 |
2.2.1 试验材料 | 第18-19页 |
2.2.2 试验仪器 | 第19页 |
2.3 试验方法 | 第19-22页 |
2.3.1 芦丁标准曲线的绘制 | 第19页 |
2.3.2 马齿苋黄酮类化合物的含量测定方法 | 第19页 |
2.3.3 马齿苋黄酮类化合物超声波提取单因素试验 | 第19-20页 |
2.3.4 马齿苋黄酮类化合物超声波提取相应面试验 | 第20页 |
2.3.5 马齿苋黄酮清除DPPH自由基能力试验 | 第20-21页 |
2.3.6 马齿苋黄酮清除羟基自由基(·OH)能力试验 | 第21页 |
2.3.7 马齿苋黄酮清除超氧阴离子(O~(2-))自由基能力试验 | 第21-22页 |
2.3.8 统计分析 | 第22页 |
2.4 结果与讨论 | 第22-30页 |
2.4.1 乙醇体积分数对马齿苋黄酮提取率的影响 | 第23页 |
2.4.2 料液比对马齿苋黄酮提取率的影响 | 第23-24页 |
2.4.3 超声温度对马齿苋黄酮提取率的影响 | 第24-25页 |
2.4.4 超声时间对马齿苋黄酮提取率的影响 | 第25页 |
2.4.5 响应面对马齿苋黄酮类化合物提取率的影响 | 第25-28页 |
2.4.6 马齿苋黄酮DPPH自由基清除率的测定结果 | 第28-29页 |
2.4.7 马齿苋黄酮羟基自由基(·OH)清除率的测定结果 | 第29页 |
2.4.8 马齿苋黄酮超氧阴离子自由基(O~(2-))清除率的测定结果 | 第29-30页 |
2.5 本章小结 | 第30-32页 |
第3章 马齿苋黄酮的分离纯化及单体鉴定 | 第32-39页 |
3.1 引言 | 第32页 |
3.2 试验材料及仪器 | 第32-33页 |
3.2.1 试验材料 | 第32页 |
3.2.2 试验仪器 | 第32-33页 |
3.3 试验方法 | 第33-35页 |
3.3.1 样品处理 | 第33页 |
3.3.2 聚酰胺粉的预处理及再生 | 第33-34页 |
3.3.3 马齿苋黄酮类化合物分离纯化研究 | 第34-35页 |
3.4 结果与讨论 | 第35-37页 |
3.4.1 马齿苋纯化黄酮的高效液相色谱检测结果 | 第35-37页 |
3.4.2 马齿苋纯化黄酮的薄层色谱检测结果 | 第37页 |
3.5 本章小结 | 第37-39页 |
第4章 马齿苋黄酮及槲皮素改善胰岛细胞胰岛素抵抗的机制研究 | 第39-65页 |
4.1 引言 | 第39页 |
4.2 材料及仪器 | 第39-43页 |
4.2.1 试验材料 | 第40-41页 |
4.2.2 试验仪器 | 第41页 |
4.2.3 相关试剂的配制 | 第41-43页 |
4.3 试验方法 | 第43-52页 |
4.3.1 药物的制备 | 第43页 |
4.3.2 HIT-T15细胞的培养 | 第43-45页 |
4.3.3 马齿苋黄酮及槲皮素对HIT-T15细胞相对增殖率影响 | 第45页 |
4.3.4 HIT-T15细胞胰岛素抵抗模型建立 | 第45页 |
4.3.5 葡萄糖氧化酶法鉴定胰岛素抵抗模型 | 第45-46页 |
4.3.6 蛋白印记法(Western blotting) | 第46-49页 |
4.3.7 逆转录聚合酶链式反应(RT-PCR) | 第49-51页 |
4.3.8 统计分析 | 第51-52页 |
4.4 结果与讨论 | 第52-63页 |
4.4.1 MTT比色法 | 第52-53页 |
4.4.2 形态学观察 | 第53-54页 |
4.4.3 葡萄糖吸收结果分析 | 第54-55页 |
4.4.4 蛋白标准曲线 | 第55-56页 |
4.4.5 Western blot检测HIT-T15细胞胰岛素抵抗信号转导通路相关基因的蛋白水平表达 | 第56-61页 |
4.4.6 RT-PCR检测HIT-T15细胞胰岛素抵抗信号转导通路相关基因转录水平表达的影响 | 第61-63页 |
4.5 本章小结 | 第63-65页 |
第5章 马齿苋黄酮对Ⅱ型糖尿病大鼠的作用机制探讨 | 第65-75页 |
5.1 引言 | 第65-66页 |
5.2 试验材料及仪器 | 第66-67页 |
5.2.1 试验材料 | 第66页 |
5.2.2 试验仪器 | 第66-67页 |
5.3 试验方法 | 第67-70页 |
5.3.1 试验溶液的配制 | 第67-68页 |
5.3.2 马齿苋黄酮类化合物对Ⅱ型糖尿病大鼠糖脂代谢的影响 | 第68-69页 |
5.3.3 RT-PCR | 第69页 |
5.3.4 统计分析 | 第69-70页 |
5.4 结果与讨论 | 第70-74页 |
5.4.1 POF对Ⅱ型糖尿病大鼠FBG的影响 | 第70页 |
5.4.2 POF对Ⅱ型糖尿病大鼠血脂的影响 | 第70-71页 |
5.4.3 POF对Ⅱ型糖尿病大鼠的抗氧化活性的影响 | 第71-72页 |
5.4.4 RT-PCR检测大鼠胰脏胰岛素抵抗信号转导通路相关基因转录水平表达的影响 | 第72-74页 |
5.5 本章小结 | 第74-75页 |
第6章 结论与展望 | 第75-77页 |
6.1 结论 | 第75页 |
6.2 展望 | 第75-77页 |
参考文献 | 第77-84页 |
攻读学位期间的研究成果及所获荣誉 | 第84-85页 |
致谢 | 第85-86页 |
附录 缩写词对照表 | 第86页 |