| 英文缩略词 | 第5-7页 |
| 摘要 | 第7-10页 |
| ABSTRACT | 第10-11页 |
| 前言 | 第18-30页 |
| 1 骨质疏松症的研究现状 | 第18-24页 |
| 1.1 骨质疏松症的概述 | 第18页 |
| 1.2 骨质疏松症的发病机理 | 第18-22页 |
| 1.2.1 骨生成的分子机制 | 第19-20页 |
| 1.2.2 骨吸收的分子机制 | 第20-22页 |
| 1.3 骨质疏松症的诊断方法 | 第22-24页 |
| 1.3.1 骨密度 | 第22页 |
| 1.3.2 骨生物力学 | 第22-23页 |
| 1.3.3 骨组织形态学和形态计量学 | 第23页 |
| 1.3.4 骨代谢生化指标 | 第23-24页 |
| 1.3.5 炎症因子 | 第24页 |
| 2 海洋生物活性肽的研究进展 | 第24-28页 |
| 2.1 南极磷虾的研究进展 | 第24-25页 |
| 2.2 磷酸化对蛋白/肽功能的影响 | 第25-26页 |
| 2.3 海洋生物活性肽的生理功能 | 第26-28页 |
| 2.3.1 胶原蛋白肽改善机体的骨质疏松症 | 第26页 |
| 2.3.2 磷酸化肽促进机体对钙的吸收 | 第26-27页 |
| 2.3.3 降血压肽提高机体的心血管功能 | 第27页 |
| 2.3.4 抗氧化肽提高机体的抗氧化能力 | 第27页 |
| 2.3.5 免疫活性肽提高机体的免疫力 | 第27-28页 |
| 2.3.6 其他生理功能活性 | 第28页 |
| 3 立题依据、研究目的和意义 | 第28-30页 |
| 第一章 磷酸化南极磷虾肽对骨质疏松症大鼠的改善作用 | 第30-51页 |
| 第一节 磷酸化南极磷虾肽对骨质疏松症大鼠骨代谢生化指标的影响 | 第31-39页 |
| 1 材料和方法 | 第31-33页 |
| 1.1 实验材料 | 第31页 |
| 1.1.1 磷酸化南极磷虾肽 | 第31页 |
| 1.1.2 实验动物 | 第31页 |
| 1.1.3 主要实验试剂 | 第31页 |
| 1.1.4 主要实验仪器 | 第31页 |
| 1.2 实验方法 | 第31-33页 |
| 1.2.1 骨质疏松症大鼠模型的建立及动物实验 | 第31-32页 |
| 1.2.2 血清E2水平的测定 | 第32页 |
| 1.2.3 血清BALP、OCN、PICP、OPG和RANKL水平的测定 | 第32页 |
| 1.2.4 血清TRACP、Cath-k、CTX-1和RANK水平的测定 | 第32-33页 |
| 1.2.5 尿液Ca、P和DPD水平的测定 | 第33页 |
| 1.2.6 统计学分析 | 第33页 |
| 2 实验结果 | 第33-39页 |
| 2.1 PP-AKP对大鼠体重的影响 | 第33-34页 |
| 2.2 PP-AKP对大鼠子宫的影响 | 第34页 |
| 2.3 PP-AKP对大鼠血清E2含量的影响 | 第34-35页 |
| 2.4 PP-AKP对大鼠血清BALP活性和OCN、PICP、OPG、RANKL含量的影响 | 第35-36页 |
| 2.5 PP-AKP对大鼠血清TRACP、Cath-k活性和CTX-I、RANK含量的影响 | 第36-37页 |
| 2.6 PP-AKP对大鼠尿液Ca、P和DPD含量的影响 | 第37-39页 |
| 第二节 磷酸化南极磷虾肽对骨质疏松症大鼠炎症因子水平的影响 | 第39-42页 |
| 1 材料和方法 | 第39-40页 |
| 1.1 实验材料 | 第39页 |
| 1.1.1 磷酸化南极磷虾肽与实验动物 | 第39页 |
| 1.1.2 主要实验试剂 | 第39页 |
| 1.1.3 主要实验仪器 | 第39页 |
| 1.2 实验方法 | 第39-40页 |
| 1.2.1 骨质疏松症大鼠模型的建立及动物实验 | 第39页 |
| 1.2.2 血清TNF-α含量的测定 | 第39-40页 |
| 1.2.3 血清IL-6含量的测定 | 第40页 |
| 1.2.4 血清IL-1β含量的测定 | 第40页 |
| 1.2.5 血清NO含量的测定 | 第40页 |
| 1.2.6 血清COX-2活性的测定 | 第40页 |
| 1.2.7 统计学分析 | 第40页 |
| 2 实验结果 | 第40-42页 |
| 2.1 PP-AKP对大鼠血清TNF-α含量的影响 | 第40页 |
| 2.2 PP-AKP对大鼠血清IL-6含量的影响 | 第40页 |
| 2.3 PP-AKP对大鼠血清IL-1β含量的影响 | 第40-41页 |
| 2.4 PP-AKP对大鼠血清NO含量的影响 | 第41页 |
| 2.5 PP-AKP对大鼠血清COX-2活性的影响 | 第41-42页 |
| 第三节 磷酸化南极磷虾肽对骨质疏松症大鼠骨组织结构的影响 | 第42-51页 |
| 1 材料和方法 | 第42-43页 |
| 1.1 实验材料 | 第42页 |
| 1.1.1 磷酸化南极磷虾肽与实验动物 | 第42页 |
| 1.1.2 主要实验试剂 | 第42页 |
| 1.1.3 主要实验仪器 | 第42页 |
| 1.2 实验方法 | 第42-43页 |
| 1.2.1 骨质疏松症大鼠模型的建立和动物实验 | 第42页 |
| 1.2.2 股骨和胫骨骨密度测定 | 第42-43页 |
| 1.2.3 胫骨生物力学测定 | 第43页 |
| 1.2.4 股骨组织形态学和组织形态计量学测定 | 第43页 |
| 1.2.5 统计学分析 | 第43页 |
| 2 实验结果 | 第43-48页 |
| 2.1 PP-AKP提高股骨和胫骨骨密度 | 第43-44页 |
| 2.2 PP-AKP提高胫骨生物力学性能 | 第44-45页 |
| 2.3 PP-AKP修复骨组织形态结构 | 第45-48页 |
| 3 讨论 | 第48-49页 |
| 4 本章小结 | 第49-51页 |
| 第二章 磷酸化南极磷虾肽通过Wnt/β-catenin信号通路调控骨质疏松症大鼠骨生成 | 第51-63页 |
| 1 材料和方法 | 第52-55页 |
| 1.1 实验材料 | 第52页 |
| 1.1.1 磷酸化南极磷虾肽与实验动物 | 第52页 |
| 1.1.2 主要实验试剂 | 第52页 |
| 1.1.3 主要实验仪器 | 第52页 |
| 1.2 实验方法 | 第52-55页 |
| 1.2.1 骨质疏松症大鼠模型的建立及动物实验 | 第52-53页 |
| 1.2.2 qRT-PCR分析 | 第53-54页 |
| 1.2.3 Western blot分析 | 第54-55页 |
| 1.2.4 统计学分析 | 第55页 |
| 2 实验结果 | 第55-61页 |
| 2.1 PP-AKP对Wnt/β-catenin信号通路关键基因mRNA表达的影响 | 第55-56页 |
| 2.2 PP-AKP对Wnt/β-catenin信号通路关键基因蛋白表达的影响 | 第56-59页 |
| 2.3 PP-AKP对成骨细胞功能相关基因COL I、OCN和ALP mRNA表达的影响 | 第59-61页 |
| 3 讨论 | 第61-62页 |
| 4 结论 | 第62-63页 |
| 第三章 磷酸化南极磷虾肽通过OPG/RANKL/NF-kB和OPG/RANKL/MAPKs信号通路抑制骨质疏松症大鼠骨吸收 | 第63-80页 |
| 1 材料和方法 | 第64-66页 |
| 1.1 实验材料 | 第64页 |
| 1.1.1 磷酸化南极磷虾肽与实验动物 | 第64页 |
| 1.1.2 主要实验试剂 | 第64页 |
| 1.1.3 主要实验仪器 | 第64页 |
| 1.2 实验方法 | 第64-66页 |
| 1.2.1 骨质疏松症大鼠模型的建立及动物实验 | 第64页 |
| 1.2.2 qRT-PCR分析 | 第64-65页 |
| 1.2.3 Western blot分析 | 第65页 |
| 1.2.4 统计学分析 | 第65-66页 |
| 2 实验结果 | 第66-77页 |
| 2.1 PP-AKP对OPG、RANKL的mRNA及蛋白表达的影响 | 第66-67页 |
| 2.2 PP-AKP对OPG/RANKL/NF-κB通路关键基因mRNA表达的影响 | 第67-70页 |
| 2.3 PP-AKP对OPG/RANKL/NF-κB信号通路关键基因蛋白表达的影响 | 第70-72页 |
| 2.4 PP-AKP对OPG/RANKL/MAPKs信号通路关键基因mRNA表达的影响 | 第72-73页 |
| 2.5 PP-AKP对OPG/RANKL/MAPKs信号通路关键基因蛋白表达的影响 | 第73-74页 |
| 2.6 PP-AKP对破骨细胞功能相关基因Cath-K、MMP-9和TRACP mRNA表达的影响 | 第74-76页 |
| 2.7 PP-AKP对破骨细胞功能相关基因Cath-K和MMP-9蛋白表达的影响 | 第76-77页 |
| 3 讨论 | 第77-78页 |
| 4 结论 | 第78-80页 |
| 结论 | 第80-81页 |
| 本论文的特色及创新之处 | 第81-82页 |
| 参考文献 | 第82-91页 |
| 致谢 | 第91-92页 |
| 个人简历 | 第92-93页 |
| 发表的学术论文 | 第93页 |
