| 英文词缩略表 | 第7-8页 |
| 中文摘要 | 第8-11页 |
| 英文摘要 | 第11-14页 |
| 前言 | 第15-17页 |
| 第一部分 多光子显微成像技术诊断胰腺肿物的实验研究 | 第17-40页 |
| 材料与方法 | 第18-26页 |
| 1 实验材料 | 第18-22页 |
| 1.1 HE染色系统 | 第18-19页 |
| 1.2 多光子显微成像系统 | 第19-22页 |
| 2 实验方法 | 第22-26页 |
| 2.1 石蜡片的实验方法 | 第22-24页 |
| 2.2 新鲜标本的实验方法 | 第24-25页 |
| 2.3 统计方法 | 第25-26页 |
| 结果 | 第26-36页 |
| 1 石蜡片的实验结果 | 第26-32页 |
| 1.1 病人统计学资料和样品特征 | 第26页 |
| 1.2正常胰腺组织的MPM诊断学特征 | 第26-27页 |
| 1.3 胰腺良性肿瘤的MPM诊断学特征 | 第27-28页 |
| 1.4 胰腺恶性肿瘤的MPM诊断学特征 | 第28-30页 |
| 1.5 正常胰腺和胰腺肿物的定量分析 | 第30-32页 |
| 2 新鲜标本的实验结果 | 第32-36页 |
| 2.1 病人统计学资料和样品特征 | 第32-33页 |
| 2.2 正常胰腺组织的MPM诊断学特征 | 第33-35页 |
| 2.3 胰腺癌组织的MPM诊断学特征 | 第35-36页 |
| 讨论 | 第36-39页 |
| 结论 | 第39-40页 |
| 第二部分：多光子显微成像技术在梗阻性黄疸肝缺血再灌注损伤中的应用 | 第40-99页 |
| 一 梗阻性黄疸实验动物模型的建立 | 第41-48页 |
| 材料与方法 | 第41-43页 |
| 1.材料 | 第41-42页 |
| 1.1 实验动物、动物喂养及术前准备 | 第41页 |
| 1.2 实验器械 | 第41-42页 |
| 1.3 实验试剂 | 第42页 |
| 2、方法 | 第42-43页 |
| 2.1 实验动物分组 | 第42页 |
| 2.2 梗阻性黄疽模型的建立 | 第42-43页 |
| 结果 | 第43-46页 |
| 1 手术情况的观察 | 第43页 |
| 2 两组大鼠性状的改变 | 第43-45页 |
| 3 两组大鼠肝功能变化 | 第45-46页 |
| 讨论 | 第46-47页 |
| 结论 | 第47-48页 |
| 二 梗阻性黄疸后肝缺血再灌注损伤的机制研究 | 第48-83页 |
| 材料与方法 | 第48-58页 |
| 1.材料 | 第48-51页 |
| 1.1 实验动物、动物喂养及术前准备 | 第48-49页 |
| 1.2 实验器械 | 第49页 |
| 1.3 实验试剂 | 第49-50页 |
| 1.4 实验仪器 | 第50-51页 |
| 2.实验方法 | 第51-58页 |
| 结果 | 第58-79页 |
| 1 手术情况的观察 | 第58页 |
| 2 两组大鼠肝功能改变 | 第58-62页 |
| 3 两组大鼠的TNF‐a和IL‐1β 水平 | 第62-64页 |
| 4 两组大鼠病理学改变 | 第64-68页 |
| 5 大鼠肝组织切片的免疫组化改变 | 第68-74页 |
| 6 两组大鼠NF‐κB、TNF‐α 和IL‐1β m RNA表达水平 | 第74-79页 |
| 讨论 | 第79-82页 |
| 结论 | 第82-83页 |
| 三 多光子显微成像技术对梗阻性黄疸肝缺血再灌注损伤的光学诊断 | 第83-99页 |
| 材料与方法 | 第83-85页 |
| 1 实验材料 | 第83-84页 |
| 1.1 实验仪器 | 第83-84页 |
| 1.2 实验试剂 | 第84页 |
| 2 实验方法 | 第84-85页 |
| 2.1.实验样品准备 | 第84页 |
| 2.2 H&E病理染色过程 | 第84页 |
| 2.3 MPM检测 | 第84-85页 |
| 2.4 统计方法 | 第85页 |
| 结果 | 第85-95页 |
| 1 SO组实验结果 | 第85-86页 |
| 2 HIRI组的实验结果 | 第86-91页 |
| 3 SO组和HIRI组NADH/FAD荧光强度对比的实验结果 | 第91-95页 |
| 讨论 | 第95-98页 |
| 结论 | 第98-99页 |
| 参考文献 | 第99-109页 |
| 文献综述 | 第109-123页 |
| 参考文献 | 第117-123页 |
| 致谢 | 第123页 |
