| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 第一章 绪论 | 第12-33页 |
| 1.1 研究背景 | 第12页 |
| 1.2 普瑞巴林简介 | 第12-14页 |
| 1.3 普瑞巴林市场分析 | 第14-15页 |
| 1.4 普瑞巴林合成方法 | 第15-27页 |
| 1.4.1 化学合成法 | 第15-22页 |
| 1.4.1.1 去对称化法合成普瑞巴林中间体 | 第16-18页 |
| 1.4.1.2 手性源途径合成普瑞巴林手性中间体 | 第18-19页 |
| 1.4.1.3 不对称合成制备普瑞巴林手性中间体 | 第19-22页 |
| 1.4.2 生物合成法 | 第22-27页 |
| 1.5 本论文的研究内容 | 第27-28页 |
| 参考文献 | 第28-33页 |
| 第二章 动力学拆分2-羧乙基-3-氰基-5-甲基己酸乙酯菌株的筛选 | 第33-49页 |
| 2.1 引言 | 第33-34页 |
| 2.2 材料与方法 | 第34-37页 |
| 2.2.1 土样 | 第34页 |
| 2.2.2 化学试剂与主要仪器 | 第34页 |
| 2.2.3 培养基 | 第34-35页 |
| 2.2.3.1 富集培养基 | 第34-35页 |
| 2.2.3.2 平板筛选培养基 | 第35页 |
| 2.2.3.3 斜面培养基 | 第35页 |
| 2.2.3.4 发酵培养基 | 第35页 |
| 2.2.4 菌株筛选过程 | 第35页 |
| 2.2.5 全细胞转化 | 第35页 |
| 2.2.6 产物对映体过量值的测定 | 第35-36页 |
| 2.2.7 产物浓度的测定 | 第36页 |
| 2.2.8 菌种鉴定 | 第36-37页 |
| 2.2.8.1 菌种形态学研究 | 第36页 |
| 2.2.8.2 菌种的生理生化鉴定 | 第36-37页 |
| 2.2.8.3 16S rDNA的扩增和序列分析 | 第37页 |
| 2.2.8.4 系统发育学分析 | 第37页 |
| 2.2.9 菌株ZJB-09203底物特异性研究 | 第37页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第37-46页 |
| 2.3.1 检测方法的建立 | 第37-40页 |
| 2.3.1.1 产物和底物的手性分析 | 第38-39页 |
| 2.3.1.2 反应体系中产物浓度的检测 | 第39-40页 |
| 2.3.2 菌种筛选结果 | 第40-41页 |
| 2.3.3 产物及底物的鉴定 | 第41-42页 |
| 2.3.4 菌株ZJB-09203的鉴定 | 第42-45页 |
| 2.3.4.1 形态学观察 | 第42页 |
| 2.3.4.2 生理生化鉴定 | 第42-43页 |
| 2.3.4.3 16S rDNA序列测序结果分析 | 第43-45页 |
| 2.3.5 菌株ZJB-09203底物特异性研究 | 第45-46页 |
| 2.4 本章小结 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-49页 |
| 第三章 M. morganii ZJB09203产酯酶条件的优化 | 第49-61页 |
| 3.1 引言 | 第49页 |
| 3.2 材料与方法 | 第49-51页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第50页 |
| 3.2.1.1 菌种 | 第50页 |
| 3.2.1.2 培养基 | 第50页 |
| 3.2.2 实验方法 | 第50-51页 |
| 3.2.2.1 菌体培养 | 第50页 |
| 3.2.2.2 生物量测定 | 第50页 |
| 3.2.2.3 酶活及测定方法 | 第50页 |
| 3.2.2.4 正交试验 | 第50-51页 |
| 3.2.2.5 M. morganii ZJB-09203立体选择性拆分CNDE | 第51页 |
| 3.2.2.6 产物对映体过量值的测定 | 第51页 |
| 3.2.2.7 产物浓度的测定 | 第51页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第51-59页 |
| 3.3.1 对硝基苯酚的标准曲线 | 第51-52页 |
| 3.3.2 碳源的选择 | 第52页 |
| 3.3.3 氮源的选择 | 第52-53页 |
| 3.3.4 金属离子的选择 | 第53-54页 |
| 3.3.5 诱导剂及表面活性剂的选择 | 第54页 |
| 3.3.6 磷源的选择 | 第54-55页 |
| 3.3.7 培养基初始pH的选择 | 第55-56页 |
| 3.3.8 正交试验 | 第56-58页 |
| 3.3.9 菌种生长及产酶过程 | 第58页 |
| 3.3.10 M. morganii ZJB-09203转化进程 | 第58-59页 |
| 3.4 本章小结 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-61页 |
| 第四章 M. morganii ZJB-09203全细胞催化制-备S-2-羧乙基-3-氰基-5-甲基己酸的研究 | 第61-77页 |
| 4.0 前言 | 第61-62页 |
| 4.1 材料与方法 | 第62-63页 |
| 4.1.1 菌种 | 第62页 |
| 4.1.2 培养基 | 第62页 |
| 4.1.3 菌体培养方法 | 第62页 |
| 4.1.4 反应的产率以及产物光学纯度的测定 | 第62页 |
| 4.1.5 气相分析方法 | 第62-63页 |
| 4.1.5.1 产物对映体过量值的测定 | 第62页 |
| 4.1.5.2 产物浓度的测定 | 第62-63页 |
| 4.2 结果与讨论 | 第63-74页 |
| 4.2.1 转化温度的选择 | 第63-64页 |
| 4.2.2 pH对转化率的影响 | 第64-65页 |
| 4.2.3 不同无机盐对转化率的影响 | 第65-66页 |
| 4.2.4 两相体系对转化的影响 | 第66-67页 |
| 4.2.5 共溶剂和表面活性剂对转化的影响 | 第67-69页 |
| 4.2.6 最适底物浓度 | 第69-70页 |
| 4.2.7 在S/C相同的情况下,不同底物浓度对转化的影响 | 第70-71页 |
| 4.2.8 分批补料底物对拆分效果的影响 | 第71-72页 |
| 4.2.9 添加树脂对拆分反应的影响 | 第72-73页 |
| 4.2.10 D201不同添加量对拆分效果的影响 | 第73页 |
| 4.2.11 高底物浓度(≥1.0M)对拆分效果的影响 | 第73-74页 |
| 4.3 本章小结 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-77页 |
| 第五章 结论与展望 | 第77-79页 |
| 5.1 结论 | 第77-78页 |
| 5.2 展望 | 第78-79页 |
| 攻读期成果 | 第79-80页 |
| 致谢 | 第80页 |
