| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 缩略表 | 第11-12页 |
| 第一章 前言 | 第12-22页 |
| 1.1 马铃薯种植及营养 | 第12页 |
| 1.2 试管块茎的形成及优势 | 第12-15页 |
| 1.2.1 试管薯的形成 | 第12-13页 |
| 1.2.2 脱毒试管薯的优势 | 第13-14页 |
| 1.2.3 多种因素影响试管薯的形成 | 第14-15页 |
| 1.3 马铃薯块茎遗传研究进展 | 第15-18页 |
| 1.3.1 马铃薯块茎形成相关QTL的研究进展 | 第15-16页 |
| 1.3.2 马铃薯四体遗传及遗传图谱构建 | 第16-18页 |
| 1.4 基于BSA的RNA-seq测序分析以及SNP标记开发 | 第18-21页 |
| 1.4.1 BSA技术 | 第18-19页 |
| 1.4.2 SNP标记 | 第19页 |
| 1.4.3 HRM技术 | 第19-21页 |
| 1.5 课题的提出 | 第21-22页 |
| 第二章 MT I群体试管薯相关性状表型鉴定 | 第22-28页 |
| 2.1 材料与方法 | 第22-23页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第22页 |
| 2.1.2 研究方法 | 第22-23页 |
| 2.1.2.1 基础苗的培养及繁殖 | 第22页 |
| 2.1.2.2 试管薯的诱导培养 | 第22-23页 |
| 2.1.2.3 数据记录和统计分析 | 第23页 |
| 2.2 结果与分析 | 第23-28页 |
| 2.2.1 两种光周期下匍匐茎发生和试管薯形成时间的群体分布 | 第23-24页 |
| 2.2.2 两种光周期下试管薯形成和膨大能力的群体分布 | 第24-26页 |
| 2.2.3 两种光周期下试管薯形成方式的群体分布 | 第26-28页 |
| 第三章 基于BSA的RNA-seq测序分析以及结薯表型相关SNP标记开发 | 第28-41页 |
| 3.1 材料与方法 | 第28-33页 |
| 3.1.1 供试材料及处理方法 | 第28-29页 |
| 3.1.2 转录组测序 | 第29-31页 |
| 3.1.2.1 Trizol法抽提植物总RNA与混样 | 第29-30页 |
| 3.1.2.2 RNA混样质量检测及建库测序 | 第30-31页 |
| 3.1.3 SNP位点分析及引物设计 | 第31页 |
| 3.1.3.1 差异SNP位点筛选 | 第31页 |
| 3.1.3.2 小片段法引物设计 | 第31页 |
| 3.1.4 利用高分辨率熔解曲线对SNP分型 | 第31-33页 |
| 3.1.4.1 CTAB法小提植物总DNA及模板配制 | 第31-32页 |
| 3.1.4.2 PCR扩增及HRM法对SNP分型 | 第32-33页 |
| 3.2 结果与分析 | 第33-41页 |
| 3.2.1 转录组测序分析 | 第33-38页 |
| 3.2.2 SNP标记分型 | 第38-41页 |
| 第四章 遗传连锁图谱和试管薯形成QTL分析 | 第41-53页 |
| 4.1 SNP标记加密图谱 | 第41-42页 |
| 4.2 多个试管薯形成性状的单标记分析 | 第42-48页 |
| 4.2.1 结薯率 | 第42页 |
| 4.2.2 单薯重 | 第42-43页 |
| 4.2.3 初始结薯时间 | 第43页 |
| 4.2.4 不同表型相关标记比较 | 第43-48页 |
| 4.3 QTL定位 | 第48-52页 |
| 4.3.1 结薯率相关QTL的定位 | 第48-51页 |
| 4.3.2 单薯重相关QTL的定位 | 第51页 |
| 4.3.3 初始结薯时间相关QTL定位 | 第51-52页 |
| 4.4 单标记分析结果与QTL定位结果分析讨论 | 第52-53页 |
| 4.4.1 相关标记与QTL定位结果比较 | 第52页 |
| 4.4.2 两亲本间染色体上QTL定位分析讨论 | 第52-53页 |
| 第五章 讨论 | 第53-55页 |
| 5.1 表型鉴定结果与前人数据比较 | 第53页 |
| 5.2 相关标记以及QTL定位结果与前人结果比较 | 第53-54页 |
| 5.3 小结与展望 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-61页 |
| 致谢 | 第61页 |
