| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 中英文对照缩略词 | 第7-11页 |
| 第一章 绪论 | 第11-25页 |
| 1.1 朝鲜蓟研究现状 | 第11-17页 |
| 1.1.1 朝鲜蓟的形态特征 | 第11-12页 |
| 1.1.2 朝鲜蓟的功能成分 | 第12-14页 |
| 1.1.3 朝鲜蓟药理药效研究 | 第14-16页 |
| 1.1.4 开发前景 | 第16-17页 |
| 1.2 酒精滥用的危害及相关研究 | 第17-22页 |
| 1.2.1 酒精性肝病的发病机制 | 第18-20页 |
| 1.2.2 酒精性肝病的治疗 | 第20-22页 |
| 1.3 选题目的与研究意义 | 第22-23页 |
| 1.4 主要研究内容 | 第23-24页 |
| 1.5 主要技术路线 | 第24-25页 |
| 第二章 高效液相谱法同时测定朝鲜蓟叶中绿原酸和洋蓟素含量 | 第25-32页 |
| 2.1 实验部分 | 第25-26页 |
| 2.1.1 仪器与设备 | 第25页 |
| 2.1.2 试剂与材料 | 第25页 |
| 2.1.3 色谱条件 | 第25-26页 |
| 2.1.4 对照品溶液的配置 | 第26页 |
| 2.1.5 供试品溶液的制备 | 第26页 |
| 2.2 结果与分析 | 第26-31页 |
| 2.2.1 流动相的选择 | 第26页 |
| 2.2.2 方法的线性范围 | 第26-27页 |
| 2.2.3 精密度试验 | 第27页 |
| 2.2.4 重复性试验 | 第27-28页 |
| 2.2.5 稳定性试验 | 第28页 |
| 2.2.6 加标回收率 | 第28-29页 |
| 2.2.7 样品的含量测定 | 第29-31页 |
| 2.3 结语 | 第31-32页 |
| 第三章 朝鲜蓟叶提取物对酒精诱导HepG2细胞损伤的影响 | 第32-53页 |
| 3.1 材料和仪器 | 第32-34页 |
| 3.1.1 细胞株 | 第32页 |
| 3.1.2 主要药品和试剂 | 第32-33页 |
| 3.1.3 主要试剂的配置方法 | 第33页 |
| 3.1.4 主要实验仪器 | 第33-34页 |
| 3.2 方法 | 第34-38页 |
| 3.2.1 HepG2细胞的培养 | 第34页 |
| 3.2.2 建立酒精损伤细胞模型条件的确定 | 第34-35页 |
| 3.2.3 朝鲜莉叶水提物作用浓度 | 第35页 |
| 3.2.4 生化比色法检测SOD、GSH、MDA、TG、AST和ALT含量 | 第35-36页 |
| 3.2.5 倒置显微镜下细胞形态观察 | 第36页 |
| 3.2.6 细胞RNA抽提及RT-PCR检测酒精性肝损伤相关基因的表达 | 第36-38页 |
| 3.2.7 统计学分析 | 第38页 |
| 3.3 结果分析 | 第38-49页 |
| 3.3.1 酒精损伤HepG2肝细胞模型建立 | 第38-40页 |
| 3.3.1.1 酒精损伤HepG2细胞的浓度确定 | 第38-39页 |
| 3.3.1.2 酒精损伤HepG2细胞的时间确定 | 第39-40页 |
| 3.3.2 朝鲜蓟叶水提物浓度确定 | 第40-42页 |
| 3.3.3 朝鲜蓟叶水提物对酒精诱导HepG2细胞保护作用 | 第42-46页 |
| 3.3.4 细胞总RNA的提取和检测 | 第46-49页 |
| 3.4 讨论 | 第49-53页 |
| 第四章 创新性和展望 | 第53-55页 |
| 参考文献 | 第55-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 作者简介 | 第64页 |
