| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 目录 | 第8-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-21页 |
| 1.1 引言 | 第10-11页 |
| 1.2 帕罗西汀的研究进展 | 第11-14页 |
| 1.2.1 帕罗西汀的合成路线 | 第11-13页 |
| 1.2.2 生物法制备帕罗西汀手性中间体 | 第13-14页 |
| 1.3 有机相脂肪酶催化研究 | 第14-19页 |
| 1.3.1 有机相脂肪酶催化特点 | 第14-15页 |
| 1.3.2 有机相脂肪酶催化的影响因素 | 第15-19页 |
| 1.4 课题思路 | 第19-21页 |
| 1.4.1 选题意义 | 第19页 |
| 1.4.2 研究思路和内容 | 第19-21页 |
| 第二章 帕罗西汀中间体高效液相色谱分析方法的建立 | 第21-26页 |
| 2.1 前言 | 第21页 |
| 2.2 材料和方法 | 第21-23页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第21-22页 |
| 2.2.2 实验方法 | 第22-23页 |
| 2.3 结果和讨论 | 第23-25页 |
| 2.3.1 帕罗西汀中间体紫外最大吸收波长的选择 | 第23-25页 |
| 2.3.2 帕罗西汀中间体液相色谱标准曲线 | 第25页 |
| 2.4 本章小结 | 第25-26页 |
| 第三章 有机相脂肪酶转酯化活性高通量筛选模型的建立 | 第26-32页 |
| 3.1 前言 | 第26-27页 |
| 3.2 材料和方法 | 第27-28页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第27-28页 |
| 3.2.2 实验方法 | 第28页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第28-31页 |
| 3.3.1 荧光吸收波长的选择 | 第28-29页 |
| 3.3.2 荧光检测工作曲线 | 第29-30页 |
| 3.3.3 稳定性试验 | 第30页 |
| 3.3.4 干扰试验 | 第30页 |
| 3.3.5 脂肪酶高通量筛选实例 | 第30-31页 |
| 3.4 本章小结 | 第31-32页 |
| 第四章 有机相酶法拆分帕罗西汀手性中间体反应条件研究 | 第32-42页 |
| 4.1 前言 | 第32页 |
| 4.2 材料和方法 | 第32-33页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第32-33页 |
| 4.2.2 实验方法 | 第33页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第33-41页 |
| 4.3.1 脂肪酶的筛选 | 第33-34页 |
| 4.3.2 酰化剂对Novozym 435催化反应的影响 | 第34页 |
| 4.3.3 反应溶剂对Novozym 435催化反应的影响 | 第34-35页 |
| 4.3.4 酶浓度对酶反应初速度的影响 | 第35-36页 |
| 4.3.5 摇床转速对Novozym 435催化反应的影响 | 第36-37页 |
| 4.3.6 反应温度对Novozym 35催化反应的影响 | 第37页 |
| 4.3.7 底物浓度对Novozym 435催化反应的影响 | 第37-38页 |
| 4.3.8 底物酰化剂摩尔比对Novozym 435催化反应的影响 | 第38-39页 |
| 4.3.9 Novozym 435催化反应的时间曲线 | 第39-40页 |
| 4.3.10 Novozym 435的重复利用 | 第40页 |
| 4.3.11 酶反应后的帕罗西汀中间体比旋光值测定 | 第40-41页 |
| 4.4 本章小结 | 第41-42页 |
| 第五章 结论与建议 | 第42-44页 |
| 5.1 总结 | 第42页 |
| 5.2 建议 | 第42-44页 |
| 参考文献 | 第44-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第49页 |
