| 摘要 | 第6-9页 |
| Abstract | 第9-12页 |
| 第一章 前言 | 第16-63页 |
| 1.1 概述 | 第16-18页 |
| 1.2 基于元素标记的ICP-MS技术 | 第18-50页 |
| 1.2.1 ICP-MS的发展及新应用 | 第18-20页 |
| 1.2.2 元素标记ICP-MS技术中的识别作用 | 第20-29页 |
| 1.2.2.1 抗原-抗体识别 | 第20-21页 |
| 1.2.2.2 基于糖基的识别 | 第21-24页 |
| 1.2.2.3 适配体识别 | 第24-26页 |
| 1.2.2.4 酶-底物识别 | 第26-28页 |
| 1.2.2.5 其他识别作用 | 第28-29页 |
| 1.2.3 元素标签 | 第29-37页 |
| 1.2.3.1 内源性标签 | 第29-31页 |
| 1.2.3.2 外源性标签 | 第31-37页 |
| 1.2.3.2.1 金属螯合物 | 第31-33页 |
| 1.2.3.2.2 含金属的聚合物 | 第33-35页 |
| 1.2.3.2.3 金属纳米粒子 | 第35-37页 |
| 1.2.3.2.4 其它标签 | 第37页 |
| 1.2.4 元素标记ICP-MS技术中的信号放大策略 | 第37-50页 |
| 1.2.4.1 基于DNA连接酶的放大反应 | 第38-40页 |
| 1.2.4.2 滚环扩增反应(RCA) | 第40-42页 |
| 1.2.4.3 杂交链式反应(HCR) | 第42-49页 |
| 1.2.4.4 多重放大技术 | 第49-50页 |
| 1.3 元素标记ICP-MS技术在生物分析中的应用 | 第50-61页 |
| 1.3.1 元素标记ICP-MS技术在蛋白质定量分析中的应用 | 第51-55页 |
| 1.3.2 元素标记ICP-MS技术在细胞分析中的应用 | 第55-58页 |
| 1.3.3 元素标记ICP-MS技术在核酸分析中的应用 | 第58-60页 |
| 1.3.4 ICP-MS技术在糖类分析中的应用 | 第60-61页 |
| 1.4 立题思想 | 第61-63页 |
| 第二章 基于硼酸富集的磁固相免疫与ICP-MS联用新方法用于血清中癌胚抗原和甲胎蛋白的同时分析 | 第63-82页 |
| 2.1 引言 | 第63-65页 |
| 2.2 实验部分 | 第65-69页 |
| 2.2.1 仪器及主要工作条件 | 第65页 |
| 2.2.2 试剂和标准溶液 | 第65-66页 |
| 2.2.3 硼酸功能化磁珠的制备 | 第66-67页 |
| 2.2.4 柠檬酸稳定的纳米金和纳米银的制备 | 第67-68页 |
| 2.2.5 纳米金/纳米银标记抗体 | 第68页 |
| 2.2.6 磁免疫分析 | 第68-69页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第69-81页 |
| 2.3.1 磁珠的表征 | 第69-70页 |
| 2.3.2 纳米金/纳米银探针的表征 | 第70-71页 |
| 2.3.3 磁免疫实验参数的优化 | 第71-76页 |
| 2.3.4 方法的选择性和特异性 | 第76-80页 |
| 2.3.6 样品分析 | 第80-81页 |
| 2.4 结论 | 第81-82页 |
| 第三章 基于硼酸识别的纳米金标记ICP-MS检测新方法用于细胞表面唾液酸的分析 | 第82-99页 |
| 3.1 引言 | 第82-84页 |
| 3.2 实验部分 | 第84-88页 |
| 3.2.1 仪器及主要工作条件 | 第84-85页 |
| 3.2.2 试剂和标准溶液 | 第85页 |
| 3.2.3 细胞培养 | 第85-86页 |
| 3.2.4 生物素化苯硼酸的合成 | 第86页 |
| 3.2.5 纳米金标记链霉亲和素的制备 | 第86-87页 |
| 3.2.6 细胞检测 | 第87页 |
| 3.2.7 细胞表面唾液酸分析 | 第87-88页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第88-98页 |
| 3.3.1 生物素化苯硼酸的表征 | 第88-89页 |
| 3.3.2 SA-AuNPs的表征 | 第89-90页 |
| 3.3.3 实验参数的优化 | 第90-94页 |
| 3.3.4 方法的特异性 | 第94-96页 |
| 3.3.5 细胞检测 | 第96-97页 |
| 3.3.6 细胞表面唾液酸含量的测定 | 第97-98页 |
| 3.4 结论 | 第98-99页 |
| 第四章 基于纳米金标记杂交链式反应放大策略的ICP-MS分析新方法用于HepG2细胞的高灵敏检测 | 第99-116页 |
| 4.1 引言 | 第99-101页 |
| 4.2 实验部分 | 第101-105页 |
| 4.2.1 仪器及主要工作条件 | 第101页 |
| 4.2.2 试剂和标准溶液 | 第101-102页 |
| 4.2.3 细胞培养 | 第102页 |
| 4.2.4 Anti-EpCAM抗体偶联磁珠的制备 | 第102-103页 |
| 4.2.5 AuNPs标记DNA串联体的制备 | 第103-104页 |
| 4.2.6 HepG2细胞的磁免疫分析 | 第104-105页 |
| 4.2.7 实际样品分析 | 第105页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第105-115页 |
| 4.3.1 AuNPs标记DNA串联体制备的优化 | 第105-107页 |
| 4.3.2 磁免疫反应条件的优化 | 第107-111页 |
| 4.3.3 方法的特异性 | 第111-112页 |
| 4.3.4 分析性能 | 第112-114页 |
| 4.3.5 实际样品分析 | 第114-115页 |
| 4.4 结论 | 第115-116页 |
| 第五章 基于凝集素识别作用的元素标记信号放大策略与ICP-MS联用检测H9N2禽流感病毒 | 第116-138页 |
| 5.1 引言 | 第116-118页 |
| 5.2 实验部分 | 第118-122页 |
| 5.2.1 仪器及主要工作条件 | 第118页 |
| 5.2.2 试剂和标准溶液 | 第118-119页 |
| 5.2.3 Anti-H9N2 HA抗体偶联磁珠的制备 | 第119-120页 |
| 5.2.4 甘露糖修饰DNA的合成 | 第120页 |
| 5.2.5 AuNPs标记DNA串联体的制备 | 第120-121页 |
| 5.2.6 H9N2病毒的磁免疫分析 | 第121-122页 |
| 5.2.7 实际样品分析 | 第122页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第122-137页 |
| 5.3.1 AuNPs标记DNA串联体制备的优化 | 第122-125页 |
| 5.3.2 实验可行性考察 | 第125-127页 |
| 5.3.3 磁免疫反应条件的优化 | 第127-133页 |
| 5.3.4 方法的特异性 | 第133-134页 |
| 5.3.5 分析性能 | 第134-136页 |
| 5.3.6 实际样品分析 | 第136-137页 |
| 5.4 结论 | 第137-138页 |
| 第六章 总结 | 第138-140页 |
| 参考文献 | 第140-168页 |
| 附录：作者在攻读博士学位期间已发表或待发表的论文 | 第168-170页 |
| 致谢 | 第170-171页 |
