摘要 | 第5-6页 |
ABSTRACT | 第6页 |
第一章 前言 | 第10-25页 |
1.1 课题的研究背景 | 第10-20页 |
1.1.1 牛乳:丰富的蛋白资源库 | 第10-11页 |
1.1.2 酪蛋白糖巨肽(Casein Glycomacropeptide,CGMP) | 第11-13页 |
1.1.3 肠粘膜系统 | 第13-15页 |
1.1.4 Th1/ Th2平衡及相关细胞因子的免疫自稳调控 | 第15-18页 |
1.1.5 炎症性肠病(Inflammatory Bowel Disease, IBD) | 第18页 |
1.1.6 免疫信号通路 | 第18-20页 |
1.2 课题研究的依据 | 第20-23页 |
1.2.1 国内外研究进展 | 第20-22页 |
1.2.2 相关的研究技术 | 第22-23页 |
1.3 课题研究的意义 | 第23-24页 |
1.4 课题研究的主要内容 | 第24-25页 |
第二章 材料与方法 | 第25-43页 |
2.1 实验材料 | 第25-29页 |
2.1.1 原料及实验动物 | 第25页 |
2.1.2 主要生化试剂及试剂盒 | 第25-26页 |
2.1.3 主要实验仪器 | 第26-27页 |
2.1.4 主要溶液的配制 | 第27-29页 |
2.2 实验方法 | 第29-43页 |
2.2.1 乳源CGMP改善小鼠溃疡性结肠炎的初步研究 | 第29-32页 |
2.2.2 乳源CGMP对正常小鼠IFN-γ及IL-4 调节的研究 | 第32-34页 |
2.2.3 乳源CGMP对UC小鼠Th1/Th2细胞因子及MUC2表达影响的研究 | 第34-39页 |
2.2.4 乳源CGMP影响小鼠肠粘膜免疫信号通路的研究 | 第39-43页 |
第三章 结果与分析 | 第43-58页 |
3.1 乳源CGMP改善小鼠溃疡性结肠炎的初步研究 | 第43-46页 |
3.1.1 CGMP对小鼠一般状态及体重变化的影响[54] | 第43-44页 |
3.1.2 CGMP对小鼠MPO活力、MDA含量及DAO活力的影响 | 第44页 |
3.1.3 CGMP对小鼠结肠大体形态损伤评分的影响 | 第44-45页 |
3.1.4 CGMP对小鼠结肠组织形态的影响 | 第45-46页 |
3.2 乳源CGMP对正常小鼠IL-4 及IFN-γ调节作用的研究[55] | 第46-50页 |
3.2.1 CGMP刺激后短时间内小鼠外周血清中IFN-γ的浓度变化 | 第46-47页 |
3.2.2 CGMP刺激后短时间内小鼠外周血清中IL-4 的浓度变化 | 第47-48页 |
3.2.3 连续 5d灌胃CGMP后小鼠肠组织中IFN-γ的浓度变化 | 第48页 |
3.2.4 连续 5d灌胃CGMP后小鼠肠组织中IL-4 的浓度变化 | 第48-49页 |
3.2.5 连续 5d灌胃CGMP后小鼠肠组织中IFN-γ/IL-4 比值的变化 | 第49-50页 |
3.3 乳源CGMP对UC小鼠Th1/Th2细胞因子及MUC2表达影响的研究 | 第50-55页 |
3.3.1 小鼠结肠的大体形态及细胞因子标准曲线 | 第50-52页 |
3.3.2 CBA法获取各组小鼠血清中Th1/Th2细胞因子图示 | 第52-54页 |
3.3.3 各组小鼠结肠组织MUC2免疫组化染色图 | 第54-55页 |
3.4 乳源CGMP影响UC小鼠肠粘膜免疫信号通路的研究 | 第55-58页 |
第四章 讨论 | 第58-62页 |
4.1 乳源CGMP改善小鼠溃疡性结肠炎的初步研究 | 第58页 |
4.2 乳源CGMP对正常小鼠IL-4 及IFN-γ调节租用的研究 | 第58-59页 |
4.3 乳源CGMP对UC小鼠Th1/Th2细胞因子及MUC2表达影响的研究 | 第59-60页 |
4.4 乳源 CGMP 影响 UC 小鼠肠粘膜免疫信号通路的研究 | 第60-62页 |
第五章 结论 | 第62-63页 |
5.1 研究结论 | 第62页 |
5.2 研究取得的创新点 | 第62页 |
5.3 还需要进一步解决的问题及研究展望 | 第62-63页 |
参考文献 | 第63-69页 |
发表论文、参加科研情况说明以及学位论文使用授权声明 | 第69-70页 |
致谢 | 第70-71页 |