生物氧化4-甲基环已酮的研究
| 致谢 | 第1-5页 |
| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 目录 | 第7-9页 |
| 1 绪论 | 第9-21页 |
| ·4-甲基ε-己内酯的重要性及其性质 | 第9-10页 |
| ·4-甲基ε-己内酯的重要性 | 第9页 |
| ·4-甲基-ε-己内酯的性质 | 第9-10页 |
| ·BVMO的研究进展 | 第10-12页 |
| ·已知的BVMO酶 | 第12-13页 |
| ·酶的固定化 | 第13-14页 |
| ·辅酶循环利用系统 | 第14-15页 |
| ·提高底物浓度的方法 | 第15-17页 |
| ·提高产物浓度的方法 | 第17-18页 |
| ·全细胞生物催化的利与弊 | 第18-20页 |
| ·本课题的研究路线及意义 | 第20-21页 |
| ·研究路线 | 第20页 |
| ·研究意义 | 第20-21页 |
| 2 基因的表达和突变 | 第21-31页 |
| ·实验材料与仪器 | 第21-23页 |
| ·实验材料 | 第21-23页 |
| ·主要仪器 | 第23页 |
| ·实验原理及方法 | 第23-28页 |
| ·重组质粒的构建 | 第23-24页 |
| ·PAMO基因表达 | 第24-25页 |
| ·定点突变 | 第25-26页 |
| ·自诱导的原理及方法 | 第26-28页 |
| ·实验结果及讨论 | 第28-31页 |
| ·重组质粒的构建 | 第28-29页 |
| ·定点突变 | 第29-30页 |
| ·自诱导 | 第30-31页 |
| 3 酶催化氧化4-甲基环己酮 | 第31-37页 |
| ·实验材料试剂及主要仪器 | 第31页 |
| ·实验材料 | 第31页 |
| ·实验试剂 | 第31页 |
| ·主要仪器 | 第31页 |
| ·实验原理与方法 | 第31-34页 |
| ·PAMO突变体在大肠杆菌中单独表达 | 第31-32页 |
| ·酶活测定原理及方法 | 第32-33页 |
| ·酶催化氧化4-甲基环己酮 | 第33-34页 |
| ·气相检测方法 | 第34页 |
| ·结果与讨论 | 第34-36页 |
| ·M-PAMO、CHMO的酶活 | 第34-35页 |
| ·GDH的酶活 | 第35页 |
| ·气相检测结果 | 第35-36页 |
| ·小结 | 第36-37页 |
| 4 全细胞催化氧化4 -甲基环己酮 | 第37-42页 |
| ·实验材料与仪器 | 第37页 |
| ·实验材料 | 第37页 |
| ·主要实验仪器 | 第37页 |
| ·实验方法 | 第37-40页 |
| ·双质粒共表达系统的构建 | 第37-38页 |
| ·全细胞催化氧化4-甲基环己酮 | 第38-40页 |
| ·结果与讨论 | 第40-42页 |
| ·双质粒构建结果及讨论 | 第40页 |
| ·气相色谱法检测结果与讨论 | 第40-42页 |
| 5 利用SFPR全细胞催化氧化4-甲基环己酮 | 第42-48页 |
| ·实验材料与方法 | 第42-43页 |
| ·树脂型号及来源 | 第42页 |
| ·主要仪器 | 第42-43页 |
| ·实验方法 | 第43-45页 |
| ·树脂的预处理及筛选 | 第43-44页 |
| ·选择树脂的添加量 | 第44页 |
| ·利用SFPR技术全细胞催化氧化4-甲基环己酮 | 第44-45页 |
| ·结果与讨论 | 第45-46页 |
| ·树脂筛选结果 | 第45页 |
| ·树脂的添加量的选择 | 第45-46页 |
| ·用SFPR技术全细胞催化氧化4-甲基环己酮 | 第46页 |
| ·小结 | 第46-48页 |
| 6 结论与建议 | 第48-50页 |
| ·结论 | 第48-49页 |
| ·建议 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-55页 |
