| 摘要 | 第1-12页 |
| ABSTRACT | 第12-17页 |
| 缩略词表 | 第17-20页 |
| 第一章 文献综述 | 第20-50页 |
| 第一节 植物耐盐胁迫研究进展 | 第20-28页 |
| 1 盐胁迫对植物的伤害 | 第20-21页 |
| 2 植物适应盐分能力的划分 | 第21-23页 |
| 3 植物适应盐害的机理 | 第23-28页 |
| 第二节 活性氧信号转导的研究进展 | 第28-32页 |
| 1 植物体内活性氧的来源 | 第28-29页 |
| 2 植物体内活性氧的清除 | 第29页 |
| 3 NADPH氧化酶研究进展 | 第29-32页 |
| 第三节 盐和渗透胁迫信号转导的研究进展 | 第32-36页 |
| 1 ABA与逆境信号转导 | 第33-35页 |
| 2 不依赖于ABA的基因表达 | 第35-36页 |
| 第四节 HO/CO信号系统研究进展 | 第36-41页 |
| 1 动物中HO/CO的产生及其信号转导途径 | 第36-37页 |
| 2 植物中CO的发现史 | 第37页 |
| 3 HO/CO合成代谢及相关突变体研究 | 第37-38页 |
| 4 HO/CO对植物生长发育的调节及其与其他信号分子的互作 | 第38-41页 |
| 第五节 一氧化氮信号研究进展 | 第41-45页 |
| 1 植物中NO合成的途径 | 第41-44页 |
| 2 NO与植物耐盐性 | 第44-45页 |
| 第六节 UV信号转导的研究进展 | 第45-50页 |
| 1 植物对UV辐射的防御机制 | 第45-47页 |
| 2 植物对UV-B的信号转导 | 第47-50页 |
| 第二章 HO-1通过维持ROS稳态介导小麦幼苗盐适应性 | 第50-74页 |
| 摘要 | 第50-51页 |
| 引言 | 第51-52页 |
| 第一节 材料与方法 | 第52-57页 |
| 1 试剂 | 第52页 |
| 2 CO溶液的制备 | 第52页 |
| 3 材料培养与处理 | 第52-53页 |
| 4 根生长速率和植株干重测量 | 第53页 |
| 5 膜脂质过氧化(TBARS)含量的测定 | 第53页 |
| 6 组织染色分析 | 第53页 |
| 7 H_2O_2含量测定 | 第53-54页 |
| 8 O_2~(·-)含量测定 | 第54页 |
| 9 ROS含量与分布测定 | 第54页 |
| 10 酶活性测定 | 第54-55页 |
| 11 凝胶电泳 | 第55页 |
| 12 小麦HO-1的Western blot | 第55页 |
| 13 总RNA提取和半定量RT-PCR | 第55-56页 |
| 14 统计分析 | 第56-57页 |
| 第二节 结果与分析 | 第57-70页 |
| 1 NaCl对小麦幼苗的生长和TBARS含量的影响具有浓度效应 | 第57-58页 |
| 2 HO-1介导小麦幼苗的盐适应性 | 第58页 |
| 3 CO预处理模拟低浓度NaCl诱导的盐适应 | 第58-61页 |
| 4 CO重建ROS稳态 | 第61-62页 |
| 5 CO预处理对ROS清除酶的影响 | 第62-65页 |
| 6 CO预处理对ROS产生酶的影响 | 第65-67页 |
| 7 H_2O_2介导盐适应性 | 第67-70页 |
| 第三节 讨论 | 第70-74页 |
| 1 HO-1介导小麦盐适应性 | 第70页 |
| 2 ROS稳态参与HO-1介导的小麦盐适应性 | 第70-74页 |
| 第三章 HYl介导拟南芥盐适应性的发生及RbbhD产生的ROS对其的调控 | 第74-102页 |
| 摘要 | 第74-75页 |
| 引言 | 第75-76页 |
| 第一节 材料与方法 | 第76-79页 |
| 1 植物材料与培养 | 第76页 |
| 2 突变体鉴定 | 第76-77页 |
| 3 HY1过表达株系的筛选 | 第77页 |
| 4 试剂与处理 | 第77页 |
| 5 种子萌发和主根生长 | 第77页 |
| 6 HY1的Western-Blot分析 | 第77-78页 |
| 7 定量RT-PCR检测 | 第78页 |
| 8 利用LSCM分析ROS的分布 | 第78页 |
| 9 统计分析 | 第78-79页 |
| 第二节 结果与分析 | 第79-97页 |
| 1 拟南芥HO突变体的筛选及盐敏感实验 | 第79-81页 |
| 2 HY1介导拟南芥萌发过程中的盐适应性 | 第81-84页 |
| 3 HY1介导拟南芥主根生长的盐适应性 | 第84-87页 |
| 4 HY1参与维持盐胁迫下拟南芥根部离子稳态 | 第87-90页 |
| 5 盐胁迫下NADPH氧化酶转录本及其产生ROS的变化 | 第90-91页 |
| 6 依赖于RbohD产生的ROS峰Ⅰ诱导HY1表达 | 第91-94页 |
| 7 HY1诱导表达和依赖于RbohD产生的ROS峰Ⅱ介导盐适应性 | 第94-97页 |
| 第三节 讨论 | 第97-102页 |
| 1 HY1是拟南芥盐适应信号转导途径的重要组成元件 | 第97-98页 |
| 2 RbohD产生的ROS双峰参与了HY1介导拟南芥盐适应性信号转导 | 第98-102页 |
| 第四章 渗透胁迫下HY1对ABA信号的调控机理 | 第102-124页 |
| 摘要 | 第102-103页 |
| 引言 | 第103-104页 |
| 第一节 材料与方法 | 第104-106页 |
| 1 植物材料与培养 | 第104页 |
| 2 试剂与处理 | 第104页 |
| 3 种子萌发、子叶展开与变绿及主根生长测定 | 第104页 |
| 4 定量RT-PCR检测 | 第104页 |
| 5 干旱胁迫和气孔孔径测量 | 第104-105页 |
| 6 统计分析 | 第105-106页 |
| 第二节 结果与分析 | 第106-121页 |
| 1 拟南芥HO突变体对渗透胁迫的敏感性差异 | 第106-108页 |
| 2 HY1介导渗透和盐胁迫下拟南芥的生长受抑 | 第108-109页 |
| 3 HY1的催化产物对主根和侧根生长的影响 | 第109-111页 |
| 4 HY1调节拟南芥对渗透和盐胁迫响应的敏感性 | 第111-114页 |
| 5 HY1调节渗透和盐胁迫下胁迫响应基因的表达 | 第114页 |
| 6 HY1调节渗透和盐胁迫下ABA合成代谢基因的表达 | 第114-116页 |
| 7 HY1对ABA的敏感性分析 | 第116-120页 |
| 8 HY1对拟南芥干旱胁迫下的调节 | 第120-121页 |
| 第三节 讨论 | 第121-124页 |
| 1 HY1介导拟南芥对渗透胁迫响应的敏感性 | 第121-122页 |
| 2 HY1通过改变ABA合成和响应来调控拟南芥对渗透胁迫敏感性 | 第122-124页 |
| 第五章 盐胁迫下拟南芥HY1与NO代谢关系初探 | 第124-138页 |
| 摘要 | 第124-125页 |
| 引言 | 第125-126页 |
| 第一节 材料与方法 | 第126-127页 |
| 1 植物材料与培养 | 第126页 |
| 2 试剂与处理 | 第126页 |
| 3 种子萌发、子叶展开与变绿及主根生长测定 | 第126页 |
| 4 定量RT-PCR检测 | 第126页 |
| 5 利用LSCM分析NO含量 | 第126页 |
| 6 统计分析 | 第126-127页 |
| 第二节 结果与分析 | 第127-137页 |
| 1 盐胁迫诱导拟南芥根部NO含量上升 | 第127页 |
| 2 NR和NOA1突变体的耐盐性下降 | 第127-134页 |
| 3 盐胁迫下HO突变体内源NO产生的差异 | 第134-137页 |
| 第三节 讨论 | 第137-138页 |
| 第六章 拟南芥HY1对UV-C辐射胁迫的调控机理 | 第138-152页 |
| 摘要 | 第138-139页 |
| 引言 | 第139-140页 |
| 第一节 材料与方法 | 第140-141页 |
| 1 植物材料与培养 | 第140页 |
| 2 试剂与处理 | 第140页 |
| 3 主根生长和叶绿素含量测定 | 第140页 |
| 4 定量RT-PCR检测 | 第140页 |
| 5 紫外吸收物质检测 | 第140页 |
| 6 统计分析 | 第140-141页 |
| 第二节 结果与分析 | 第141-149页 |
| 1 拟南芥HO突变体对UV-C辐射敏感差异的比较 | 第141-144页 |
| 2 HY1调节类黄酮代谢基因及紫外吸收物质含量 | 第144-145页 |
| 3 HY1调节UV-C辐射下拟南芥类黄酮代谢基因及相关调控转录因子转录本的表达 | 第145-147页 |
| 4 HYl调节抗氧化酶基因的表达 | 第147-149页 |
| 第三节 讨论 | 第149-152页 |
| 全文结论 | 第152-154页 |
| 创新之处与展望 | 第154-156页 |
| 参考文献 | 第156-172页 |
| 附图Ⅰ | 第172-173页 |
| 附表Ⅰ | 第173-174页 |
| 附表Ⅱ | 第174-176页 |
| 附表Ⅲ | 第176-177页 |
| 附表Ⅳ | 第177-178页 |
| 附表Ⅴ | 第178-179页 |
| 附表Ⅵ | 第179-180页 |
| 攻读学位期间发表的研究论文 | 第180-182页 |
| 致谢 | 第182-183页 |
