中文摘要 | 第1-9页 |
英文摘要 | 第9-11页 |
1 引言 | 第11-17页 |
·阿维菌素的理化性质 | 第11-12页 |
·阿维菌素的药理学与毒理学 | 第12页 |
·细胞凋亡调控机制的研究进展 | 第12-15页 |
·线粒体与细胞凋亡 | 第13-14页 |
·Ca~(2+)与细胞凋亡 | 第14页 |
·Caspases与细胞凋亡 | 第14-15页 |
·阿维菌素与细胞凋亡的关系 | 第15-16页 |
·试验目的与意义 | 第16-17页 |
2 材料与方法 | 第17-23页 |
·主要仪器与材料 | 第17-18页 |
·主要仪器 | 第17页 |
·主要试剂 | 第17页 |
·试验药品 | 第17页 |
·试验动物 | 第17-18页 |
·王鸽脑神经细胞原代分离培养、纯化及处理 | 第18页 |
·神经细胞原代分离培养、纯化 | 第18页 |
·分离纯化的神经细胞的处理 | 第18页 |
·检测项目与方法 | 第18-22页 |
·AVM对神经细胞活性影响的检测 | 第18-19页 |
·AVM对神经细胞凋亡的形态学观察 | 第19-20页 |
·AVM致神经细胞 DNA损伤的检测 | 第20-21页 |
·流式细胞术检测细胞线粒体膜电位(△ψm) | 第21页 |
·流式细胞术检测磷脂酰丝氨酸(PS) | 第21页 |
·Caspase-3活性的检测 | 第21页 |
·AVM对神经细胞内[Ca~(2+)]i浓度影响的检测 | 第21-22页 |
·试验数据分析与统计 | 第22-23页 |
3 试验结果 | 第23-36页 |
·神经细胞的形态学观察 | 第23-24页 |
·培养不同时期的神经细胞的形态学观察 | 第23-24页 |
·神经细胞纯化培养 | 第24页 |
·AVM对神经细胞活性的影响 | 第24-25页 |
·MTT比色法检测结果 | 第24-25页 |
·LDH活性的检测结果 | 第25页 |
·AVM诱导神经细胞凋亡的形态学检测结果 | 第25-29页 |
·Giemsa染色观察结果 | 第25-26页 |
·AO/EB双荧光染色检测结果 | 第26-27页 |
·HE染色观察结果 | 第27-28页 |
·电镜观察结果 | 第28-29页 |
·AVM致神经细胞 DNA损伤的检测结果 | 第29-32页 |
·DNA Ladder检测结果 | 第29页 |
·碱性 SCGE检测结果 | 第29-31页 |
·TUNEL的检测结果 | 第31-32页 |
·AVM致神经细胞△ψM变化的检测结果 | 第32页 |
·AVM对神经细胞 PS影响的检测结果 | 第32-34页 |
·AVM对神经细胞 Caspase-3活性影响的检测结果 | 第34-35页 |
·AVM对神经细胞内[Ca~(2+]i影响的检测结果 | 第35-36页 |
4 讨论 | 第36-44页 |
·神经细胞分离、纯化培养条件的优化 | 第36页 |
·AVM对王鸽脑神经细胞的毒性作用 | 第36-37页 |
·AVM对王鸽脑神经细胞活性的影响 | 第36-37页 |
·AVM对脑神经细胞培养上清液中LDH活性的影响 | 第37页 |
·AVM对王鸽脑神经细胞凋亡的影响 | 第37-44页 |
·AVM对王鸽脑神经细胞的形态学影响 | 第37-38页 |
·AVM对王鸽脑神经细胞 DNA损伤的影响 | 第38-39页 |
·AVM对△ψm的影响 | 第39-40页 |
·AVM对神经细胞磷脂酰丝氨酸(PS)的影响 | 第40-41页 |
·AVM对王鸽脑神经细胞内[Ca~(2+)]i的影响 | 第41-42页 |
·AVM对王鸽脑神经细胞内Caspase-3活性的影响 | 第42-44页 |
5 结论 | 第44-45页 |
致谢 | 第45-46页 |
参考文献 | 第46-51页 |
试验结果附图 | 第51-54页 |
攻读硕士期间发表的学术论文 | 第54页 |