| 致谢 | 第1-7页 |
| 中文摘要 | 第7-10页 |
| ABSTRACT | 第10-18页 |
| 第一章 文献综述 | 第18-47页 |
| ·农药工业概况 | 第18-23页 |
| ·我国农药工业概况 | 第18-19页 |
| ·我国除草剂工业概况 | 第19-20页 |
| ·磺酰脲类除草剂的发展 | 第20-22页 |
| ·苄嘧磺隆的应用及研究进展 | 第22-23页 |
| ·除草剂对土壤环境的影响 | 第23-28页 |
| ·除草剂在土壤环境中的行为 | 第23-25页 |
| ·农药对土壤微生物的影响 | 第25-28页 |
| ·土壤微生物生态的研究方法及最新研究进展 | 第28-36页 |
| ·土壤微生物群落结构的概念 | 第28-30页 |
| ·土壤微生物群落结构的研究方法 | 第30-36页 |
| ·农药在土壤中的降解转化及其污染土壤的生物修复 | 第36-47页 |
| ·农药在土壤中的降解转化 | 第36-43页 |
| ·农药残留的检测方法 | 第43-44页 |
| ·农药污染土壤的生物修复 | 第44-47页 |
| 第二章 苄嘧磺隆降解菌株的分离及鉴定 | 第47-66页 |
| ·引言 | 第47页 |
| ·材料与方法 | 第47-52页 |
| ·土壤样品与试剂 | 第47-48页 |
| ·药品 | 第48页 |
| ·主要试验仪器 | 第48页 |
| ·主要培养基组成 | 第48页 |
| ·降解菌的富集、分离和纯化 | 第48-49页 |
| ·降解菌株的形态、生理生化特性 | 第49页 |
| ·降解菌株的BIOLOG-GP鉴定 | 第49页 |
| ·降解菌株的G+C mol%测定 | 第49页 |
| ·降解菌株的16S rDNA PCR扩增、序列测定及系统发育分析 | 第49-51页 |
| ·抗生素敏感性试验 | 第51页 |
| ·底物降解广谱性试验 | 第51-52页 |
| ·结果与讨论 | 第52-64页 |
| ·降解菌的富集、分离和纯化 | 第52页 |
| ·降解菌株的形态、生理生化特性 | 第52-56页 |
| ·降解菌株D5的G+C mol%测定 | 第56页 |
| ·降解菌株16S rDNA的PCR扩增、序列测定及系统发育分析 | 第56-59页 |
| ·抗生素敏感性试验 | 第59-64页 |
| ·底物降解广谱性试验 | 第64页 |
| ·本章小结 | 第64-66页 |
| 第三章 苄嘧磺隆降解菌的生长、降解特性研究 | 第66-86页 |
| ·引言 | 第66页 |
| ·材料与方法 | 第66-71页 |
| ·供试菌和药品 | 第66页 |
| ·降解菌株D5的生长研究 | 第66-68页 |
| ·降解菌株D5降解特性的研究 | 第68-69页 |
| ·降解菌株D5在液体培养基中的降解 | 第69页 |
| ·种群多样性试验中苄嘧磺隆降解的测定 | 第69-70页 |
| ·苄嘧磺隆降解菌株混培对苄嘧磺隆、嘧磺隆、绿磺隆和氯嘧磺隆的影响 | 第70页 |
| ·苄嘧磺隆诱导对D5菌株全细胞蛋白组成的影响 | 第70页 |
| ·降解菌株D5质粒的提取 | 第70页 |
| ·降解菌株D5质粒消除试验设计 | 第70-71页 |
| ·降解菌株D5的紫外诱变 | 第71页 |
| ·结果与讨论 | 第71-83页 |
| ·降解菌株D5的生长研究 | 第71-75页 |
| ·降解菌株D5的降解特性 | 第75-77页 |
| ·降解菌株D5在液体培养基和模拟田间淹水稻田土壤中的降解 | 第77-80页 |
| ·四株苄嘧磺隆降解菌混培养对四种磺酰脲类除草剂的降解 | 第80页 |
| ·苄嘧磺隆诱导对D5菌株全细胞蛋白组成的影响 | 第80-81页 |
| ·降解菌株D5质粒的提取 | 第81-82页 |
| ·降解菌株D5质粒消除 | 第82-83页 |
| ·降解菌株D5的紫外诱变 | 第83页 |
| ·本章小结 | 第83-86页 |
| 第四章 苄嘧磺隆对淹水稻田土壤可培养微生物种群数量的影响 | 第86-95页 |
| ·引言 | 第86页 |
| ·材料与方法 | 第86-89页 |
| ·供试土壤 | 第86-87页 |
| ·供试农药 | 第87页 |
| ·试验设计 | 第87页 |
| ·培养基配方和计数方法 | 第87-88页 |
| ·数据分析 | 第88-89页 |
| ·结果与分析 | 第89-93页 |
| ·苄嘧磺隆对淹水稻田可培养好氧微生物种群数量的影响 | 第89-92页 |
| ·苄嘧磺隆对淹水稻田可培养厌氧微生物种群数量的影响 | 第92-93页 |
| ·本章小结 | 第93-95页 |
| 第五章 苄嘧磺隆对淹水稻田土壤呼吸和土壤酶活性的影响 | 第95-103页 |
| ·引言 | 第95-96页 |
| ·材料与方法 | 第96-97页 |
| ·供试土壤 | 第96页 |
| ·供试农药 | 第96页 |
| ·试验设计 | 第96页 |
| ·土壤呼吸强度测定 | 第96页 |
| ·各种土壤酶活性的测定 | 第96-97页 |
| ·数据分析 | 第97页 |
| ·结果与分析 | 第97-101页 |
| ·苄嘧磺隆对淹水稻田土壤呼吸作用的影响 | 第97-98页 |
| ·苄嘧磺隆对淹水稻田土壤过氧化氢酶的影响 | 第98-99页 |
| ·苄嘧磺隆对淹水稻田土壤蔗糖酶活性的影响 | 第99-100页 |
| ·苄嘧磺隆对淹水稻田土壤脲酶活性的影响 | 第100页 |
| ·苄嘧磺隆对淹水稻田土壤多酚氧化酶活性的影响 | 第100-101页 |
| ·本章小结 | 第101-103页 |
| 第六章 苄嘧磺隆对淹水稻田土壤微生物种群变化的DGGE分子指纹图谱分析 | 第103-128页 |
| ·引言 | 第103-104页 |
| ·材料与方法 | 第104-110页 |
| ·供试土壤和菌株 | 第104页 |
| ·试验仪器及药品 | 第104页 |
| ·试验设计与实施 | 第104页 |
| ·土样总DNA的提取 | 第104-105页 |
| ·DNA的定量和纯度检测 | 第105页 |
| ·PCR扩增 | 第105-106页 |
| ·变性梯度凝胶电泳(DGGE) | 第106-107页 |
| ·染色 | 第107页 |
| ·割胶回收 | 第107页 |
| ·指纹图谱分析 | 第107页 |
| ·克隆和序列分析 | 第107-110页 |
| ·结果与讨论 | 第110-126页 |
| ·土壤总DNA提取结果 | 第110页 |
| ·特异性引物的PCR扩增 | 第110页 |
| ·苄嘧磺隆处理对淹水稻田土壤微生物群落结构的影响 | 第110-125页 |
| ·特异性条带的克隆与序列分析 | 第125-126页 |
| ·本章小结 | 第126-128页 |
| 第七章 三种纯种细菌对苄嘧磺隆胁迫的氧化应激反应研究 | 第128-139页 |
| ·引言 | 第128-129页 |
| ·材料与方法 | 第129-132页 |
| ·仪器及试剂 | 第129-130页 |
| ·供试菌种 | 第130页 |
| ·培养基 | 第130页 |
| ·试验设计 | 第130-131页 |
| ·数据分析 | 第131-132页 |
| ·结果与分析 | 第132-138页 |
| ·不同浓度苄嘧磺隆对菌株SOD活性的影响 | 第132页 |
| ·不同浓度苄嘧磺隆对菌株CAT活性的影响 | 第132-133页 |
| ·不同浓度苄嘧磺隆对菌株ATPase活性的影响 | 第133-134页 |
| ·苄嘧磺隆对培养24h的巨大芽孢杆菌D5、枯草芽孢杆菌B19和大肠杆菌K12 SOD活性和影响 | 第134-135页 |
| ·苄嘧磺隆对巨大芽孢杆菌D5、桔草芽孢杆菌B19和大肠杆菌K12 CAT活性的影响 | 第135-136页 |
| ·苄嘧磺隆对巨大芽孢杆菌D5、枯草芽孢杆菌B19和大肠杆菌K12 ATPase活性的影响 | 第136-137页 |
| ·PAGE电泳及活性染色观察BSM对细菌SOD同工酶组成的影响 | 第137-138页 |
| ·本章小结 | 第138-139页 |
| 论文结论与展望 | 第139-143页 |
| 1 全文主要研究结论 | 第139-141页 |
| 2 论文的创新之处 | 第141页 |
| 3 论文的不足之处与展望 | 第141-143页 |
| 参考文献 | 第143-158页 |
| 攻读博士期间论文发表及获奖情况 | 第158页 |
