| 摘要 | 第3-6页 |
| Abstract | 第6-9页 |
| 英文缩略词表 | 第10-16页 |
| 前言 | 第16-21页 |
| 第一章 以二磷酸果糖为磷源经微波水热法合成的掺锶无定形磷酸钙多孔微球骨修复应用研究 | 第21-49页 |
| 1.1 前言 | 第21-22页 |
| 1.2 材料和方法 | 第22-34页 |
| 1.2.1 试剂和设备 | 第22-25页 |
| 1.2.2 样品的制备方法 | 第25页 |
| 1.2.3 样品的物理表征 | 第25-26页 |
| 1.2.4 万古霉素装载试验 | 第26-27页 |
| 1.2.5万古霉素释放实验 | 第27页 |
| 1.2.6 细菌培养 | 第27页 |
| 1.2.7 细胞培养 | 第27-28页 |
| 1.2.8抗菌实验 | 第28页 |
| 1.2.9 支架制备与表征 | 第28-29页 |
| 1.2.10 支架细胞相容性检测 | 第29页 |
| 1.2.11 支架表面细胞形态观察 | 第29-30页 |
| 1.2.12 RT-qPCR | 第30-32页 |
| 1.2.13 大鼠颅骨极限骨缺损模型构建 | 第32页 |
| 1.2.14 Micro-CT | 第32-33页 |
| 1.2.15 组织学分析 | 第33-34页 |
| 1.2.16 统计学分析 | 第34页 |
| 1.3 结果 | 第34-45页 |
| 1.3.1 SrAPMs理化特性 | 第34-37页 |
| 1.3.2 样品万古霉素装载与释放特性 | 第37页 |
| 1.3.3 样品体外抗菌性能 | 第37-39页 |
| 1.3.4 支架理化特征 | 第39-40页 |
| 1.3.5 支架的细胞相容性 | 第40-42页 |
| 1.3.6 RT-qPCR检测rBMSCs成骨相关基因表达 | 第42-43页 |
| 1.3.7 Micro-CT分析结果 | 第43-44页 |
| 1.3.8 组织学评估结果 | 第44-45页 |
| 1.4 讨论 | 第45-48页 |
| 1.5 小结 | 第48-49页 |
| 第二章 掺锌介孔羟基磷灰石微球构建新型仿生骨组织工程支架与骨缺损修复研究 | 第49-69页 |
| 2.1 前言 | 第49-51页 |
| 2.2 材料和方法 | 第51-57页 |
| 2.2.1 试剂和设备 | 第51-53页 |
| 2.2.2 Zn-MHMs的合成与物理表征 | 第53页 |
| 2.2.3 Zn-MHMs药物负载与释放测试 | 第53-54页 |
| 2.2.4 rBMSCs分离与培养 | 第54页 |
| 2.2.5 支架制备 | 第54页 |
| 2.2.6 锌离子释放实验 | 第54-55页 |
| 2.2.7 支架细胞活性测试 | 第55页 |
| 2.2.8 支架细胞形态观察 | 第55页 |
| 2.2.9 RT-qPCR | 第55-56页 |
| 2.2.10 动物实验 | 第56页 |
| 2.2.11 Micro-CT分析 | 第56页 |
| 2.2.12 组织学分析 | 第56-57页 |
| 2.2.13 统计学分析 | 第57页 |
| 2.3 结果 | 第57-65页 |
| 2.3.1 Zn-MHMs物理特征 | 第57-59页 |
| 2.3.2 样品药物装载与释放性能 | 第59-60页 |
| 2.3.3 支架理化特性 | 第60-62页 |
| 2.3.4 支架细胞相容性 | 第62页 |
| 2.3.5 支架对rBMSCs成骨相关基因表达的影响 | 第62-63页 |
| 2.3.6 Micro-CT评估支架的骨再生性能 | 第63-64页 |
| 2.3.7 组织学评估支架的骨再生性能 | 第64-65页 |
| 2.4 讨论 | 第65-68页 |
| 2.5 小结 | 第68-69页 |
| 第三章 成骨成血管双重活性介孔羟基磷灰石微球-辛伐他汀缓释体系促进骨缺损修复研究 | 第69-98页 |
| 3.1 前言 | 第69-70页 |
| 3.2 材料和方法 | 第70-81页 |
| 3.2.1 试剂和设备 | 第70-73页 |
| 3.2.2 MHMs的合成与表征 | 第73页 |
| 3.2.3 MHMs辛伐他汀装载与释放测试 | 第73-74页 |
| 3.2.4 细胞培养(rBMSCs,EA.hy926细胞) | 第74页 |
| 3.2.5 细胞增殖试验 | 第74页 |
| 3.2.6 碱性磷酸酶(ALP)活性检测 | 第74-75页 |
| 3.2.7 RT-qPCR | 第75-76页 |
| 3.2.8 细胞迁移试验 | 第76页 |
| 3.2.9 EA.hy926 细胞成管试验 | 第76页 |
| 3.2.10 Western blot检测HIF-1α与VEGF表达 | 第76-77页 |
| 3.2.11 支架制备与表征 | 第77-78页 |
| 3.2.12 S-MHMs/Coll支架药物释放 | 第78页 |
| 3.2.13 支架细胞相容性测试 | 第78页 |
| 3.2.14 支架表面细胞形态观察 | 第78-79页 |
| 3.2.15 动物实验 | 第79页 |
| 3.2.16 Microfil灌注 | 第79页 |
| 3.2.17 Micro-CT扫描 | 第79-80页 |
| 3.2.18 组织学检测 | 第80页 |
| 3.2.19 统计学分析 | 第80-81页 |
| 3.3 结果 | 第81-94页 |
| 3.3.1 MHMs理化性质 | 第81页 |
| 3.3.2 MHMs辛伐他汀装载与释放特性 | 第81-83页 |
| 3.3.3 MHMs、S-MHMs对细胞增殖的影响 | 第83页 |
| 3.3.4 MHMs、S-MHMs对 rBMSCs ALP活性的影响 | 第83-84页 |
| 3.3.5 MHMs、S-MHMs对 rBMSCs成骨相关基因表达的影响 | 第84-86页 |
| 3.3.6 MHMs、S-MHMs对细胞迁移与成管的影响 | 第86-88页 |
| 3.3.7 MHMs、S-MHMs对 rBMSCs HIF-1α与 VEGF表达的影响 | 第88页 |
| 3.3.8 支架的理化特性与辛伐他汀释放 | 第88-90页 |
| 3.3.9 支架的细胞相容性 | 第90页 |
| 3.3.10 Micro-CT分析骨与血管再生 | 第90-91页 |
| 3.3.11 组织学检测分析骨与血管再生 | 第91-94页 |
| 3.4 讨论 | 第94-97页 |
| 3.5 小结 | 第97-98页 |
| 全文小结与展望 | 第98-100页 |
| 参考文献 | 第100-115页 |
| 致谢 | 第115-117页 |
| 发表学术论文及参加科研情况 | 第117-120页 |
