| 摘要 | 第3-6页 |
| Abstract | 第6-9页 |
| 符号说明 | 第14-16页 |
| 第一部分 文献综述 | 第16-30页 |
| 第一章 动物肿瘤疾病发生的原因 | 第16-20页 |
| 1 动物肿瘤性疾病 | 第16页 |
| 2 动物肿瘤发生的原因 | 第16-20页 |
| 2.1 化学性致癌因素 | 第16-18页 |
| 2.2 物理性致癌因素 | 第18页 |
| 2.3 生物性因素 | 第18页 |
| 2.4 营养性因素 | 第18-19页 |
| 2.5 内因 | 第19-20页 |
| 第二章 咖啡酸苯乙酯和咖啡酸对硝基苯乙酯的研究进展 | 第20-30页 |
| 1 咖啡酸苯乙酯药的理活性研究进展 | 第20-25页 |
| 1.1 咖啡酸苯乙酯的概述 | 第20页 |
| 1.2 咖啡酸苯乙酯的药理活性 | 第20-23页 |
| 1.3 CAPE抗肿瘤作用机制 | 第23-24页 |
| 1.4 咖啡酸苯乙酯构效关系 | 第24-25页 |
| 2 咖啡酸苯乙酯衍生物的合成及其构效关系 | 第25-27页 |
| 2.1 邻二酚羟基被取代衍生物 | 第25-26页 |
| 2.2 咖啡酸酰胺衍生物 | 第26页 |
| 2.3 苯环氢被取代衍生物 | 第26-27页 |
| 2.4 烷基链延长的衍生物 | 第27页 |
| 2.5 苯环对位引如基团 | 第27页 |
| 3 咖啡酸对硝基苯乙酯的研究进展 | 第27-30页 |
| 3.1 CAPE-NO_2的合成 | 第28页 |
| 3.2 CAPE-NO_2代谢研究 | 第28页 |
| 3.3 CAPE-NO_2吸收转运机制 | 第28-29页 |
| 3.4 免疫调节作用 | 第29页 |
| 3.5 心血管疾病 | 第29-30页 |
| 第二部分 试验研究 | 第30-82页 |
| 第一章 CAPE-NO_2的合成及结构表征 | 第30-38页 |
| 1 材料 | 第30-31页 |
| 1.1 药品试剂 | 第30页 |
| 1.2 主要仪器 | 第30-31页 |
| 2 方法 | 第31-32页 |
| 2.1 合成路线 | 第31页 |
| 2.2 分析鉴定 | 第31-32页 |
| 3 结果 | 第32-35页 |
| 3.1 分析鉴定 | 第32页 |
| 3.2 结构表征 | 第32-35页 |
| 4 讨论 | 第35-36页 |
| 5 小结 | 第36-38页 |
| 第二章 CAPE-NO_2对肝癌HepG-2细胞株裸鼠增殖瘤的抑制作用 | 第38-56页 |
| 1 材料 | 第38-41页 |
| 1.1 实验动物 | 第38页 |
| 1.2 细胞株 | 第38页 |
| 1.3 主要试剂 | 第38-39页 |
| 1.4 主要仪器 | 第39-40页 |
| 1.5 试剂配制 | 第40-41页 |
| 2 方法 | 第41-44页 |
| 2.1 细胞培养 | 第41页 |
| 2.2 裸鼠皮下移植瘤模型的建立 | 第41-42页 |
| 2.3 临床观察 | 第42页 |
| 2.4 计算肿瘤生长抑制率 | 第42页 |
| 2.5 测定肿瘤相对增殖率 | 第42页 |
| 2.6 计算荷瘤裸鼠脏器指数 | 第42-43页 |
| 2.7 Con A诱导荷瘤小鼠脾淋巴细胞增殖反应的影响 | 第43页 |
| 2.8 荷瘤小鼠腹腔巨噬细胞吞噬能力的检测 | 第43页 |
| 2.9 荷瘤小鼠血清IL-1、TNF-α含量的测定 | 第43-44页 |
| 2.10 荷瘤小鼠血清NO含量的测定 | 第44页 |
| 2.11 荷瘤小鼠NK细胞活性的测定 | 第44页 |
| 3 统计学分析 | 第44-45页 |
| 4 结果 | 第45-52页 |
| 4.1 临床观察结果 | 第45页 |
| 4.2 CAPE-NO_2对肝癌HepG-2裸鼠移植瘤的抑制作用 | 第45-47页 |
| 4.3 CAPE-NO_2对肝癌HepG-2荷瘤小鼠免疫功能的研究 | 第47-52页 |
| 5 讨论 | 第52-55页 |
| 6 结论 | 第55-56页 |
| 第三章 CAPE-NO_2对肝癌HepG-2细胞凋亡的影响 | 第56-78页 |
| 1 材料 | 第56-59页 |
| 1.1 细胞株来源 | 第56页 |
| 1.2 主要试剂 | 第56-57页 |
| 1.3 主要器材与仪器 | 第57页 |
| 1.4 试剂的配制 | 第57-59页 |
| 2 方法 | 第59-63页 |
| 2.1 细胞培养 | 第59页 |
| 2.2 细胞悬液的制备 | 第59-60页 |
| 2.3 HepG-2细胞体外增殖实验 | 第60页 |
| 2.4 荧光显微镜观察细胞凋亡和坏死 | 第60页 |
| 2.5 双标法检测细胞凋亡 | 第60-61页 |
| 2.6 流式细胞仪分析细胞周期变化 | 第61页 |
| 2.7 细胞总蛋白的提取 | 第61页 |
| 2.8 细胞蛋白浓度测定 | 第61页 |
| 2.9 western blot分析凋亡相关蛋白表达量 | 第61-63页 |
| 3 统计学分析 | 第63页 |
| 4 结果 | 第63-74页 |
| 4.1 CAPE-NO_2对HepG-2细胞增殖的抑制作用 | 第63-65页 |
| 4.2 CAPE-NO_2作用后HepG-2细胞凋亡的形态学变化 | 第65-66页 |
| 4.3 Annexin V-FITC/PI法分析CAPE-NO_2对HepG-2细胞凋亡率的影响 | 第66-67页 |
| 4.4 CAPE-NO_2对HepG-2细胞周期的影响 | 第67-69页 |
| 4.5 CAPE-NO_2对HepG-2细胞凋亡相关蛋白表达的影响 | 第69-74页 |
| 5 讨论 | 第74-77页 |
| 6 小结 | 第77-78页 |
| 第四章 CAPE-NO_与抗开癌HepG-2构效关系研究 | 第78-82页 |
| 1 方法 | 第78页 |
| 1.1 参数分析 | 第78页 |
| 2 结果 | 第78-79页 |
| 2.1 参数分析结果 | 第78-79页 |
| 3 讨论 | 第79页 |
| 4 小结 | 第79-82页 |
| 全文结论 | 第82-84页 |
| 参考文献 | 第84-94页 |
| 致谢 | 第94-96页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第96-97页 |
