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扇贝毒素的检测与标准化制备方法研究

致谢第4-6页
摘要第6-8页
ABSTRACT第8-9页
1 绪论第13-35页
    1.1 扇贝毒素研究概述第14-23页
        1.1.1 扇贝毒素理化性质第14-17页
        1.1.2 扇贝毒素的来源第17-19页
        1.1.3 扇贝毒素的生物代谢第19-20页
        1.1.4 扇贝毒素的毒理学特征第20-21页
        1.1.5 扇贝毒素-2研究概况第21-23页
    1.2 扇贝毒素的检测方法第23-29页
        1.2.1 生物检测方法第24-25页
        1.2.2 色谱分析方法第25-29页
    1.3 扇贝毒素的监测方法第29-30页
        1.3.1 贝肉直接检测法第29页
        1.3.2 浮游植物监测法第29页
        1.3.3 固相吸附毒素跟踪技术检测法第29-30页
    1.4 毒素标准物质的制备第30-31页
    1.5 研究的目的和意义第31-32页
    1.6 研究内容和技术方案第32-35页
        1.6.1 研究内容第32-33页
        1.6.2 技术方案第33-35页
2 扇贝毒素检测方法优化第35-44页
    2.1 实验仪器与材料第35-36页
    2.2 实验方法第36-39页
        2.2.1 色谱柱的选择第36页
        2.2.2 标准溶液的配置第36-37页
        2.2.3 建立分析方法第37页
        2.2.4 分析质谱条件优化第37-39页
    2.3 结果分析第39-43页
    2.4 实际样品测定应用第43-44页
3 扇贝毒素-2从藻中制备(条件优化)实验第44-67页
    3.1 实验仪器与材料第45-47页
    3.2 藻细胞的培养与收集第47-49页
    3.3 扇贝毒素-2提取和分离第49-51页
        3.3.1 细胞破碎方法第49页
        3.3.2 毒素提取方法第49-50页
        3.3.3 葡聚糖凝胶色谱柱分离第50-51页
    3.4 液相色谱纯化方法建立与优化第51页
    3.5 液相色谱-串联质谱分析条件第51-52页
    3.6 结果与讨论第52-66页
        3.6.1 破碎方法对制备的影响第52页
        3.6.2 提取方法对制备的影响第52-54页
        3.6.3 色谱制备条件的优化第54-66页
    3.7 制备结果第66-67页
4 扇贝毒素-2野外富集、制备与北部湾海域脂溶性毒素检测实验第67-85页
    4.1 实验仪器与材料第67-68页
    4.2 研究区域调查第68-69页
    4.3 扇贝毒素-2的富集第69-70页
        4.3.1 被动采样装置制作方式第69页
        4.3.2 采样点的部署及样品的采集第69-70页
    4.4 扇贝毒素-2的提取第70页
    4.5 葡聚糖凝胶色谱柱分离第70页
    4.6 液相色谱纯化方法建立第70-71页
    4.7 液相色谱-串联质谱分析条件第71页
    4.8 制备条件优化第71-75页
        4.8.1 葡聚糖凝胶色谱柱分离对制备的影响第71-72页
        4.8.2 洗脱模式条件优化第72-75页
    4.9 制备结果第75-76页
    4.10 北部湾海域脂溶性毒素检测实验第76-77页
        4.10.1 贝肉直接检测法第76页
        4.10.2 从贝肉中提取毒素第76-77页
        4.10.3 LC-MS/MS分析检测第77页
    4.11 野外实验检测结果分析第77-85页
        4.11.1 养殖区海域检测结果第78-79页
        4.11.2 贝肉检测结果第79-81页
        4.11.3 贝肉内与树脂中贝类毒素的相关性第81-84页
        4.11.4 结论第84-85页
5 标准物质申报第85-94页
    5.1 均匀性检验第85-87页
    5.2 稳定性检验第87-90页
    5.3 不确定度测量第90-92页
    5.4 定值分析第92-94页
6 结论与展望第94-96页
    6.1 结论与创新点第94页
    6.2 不足与展望第94-96页
参考文献第96-112页
个人简历第112-113页

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