| 中文摘要 | 第2-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 中文文摘 | 第6-11页 |
| 绪论 | 第11-19页 |
| 0.1 猕猴桃属植物简介 | 第11-12页 |
| 0.1.1 猕猴桃属植物历史发展 | 第11页 |
| 0.1.2 猕猴桃属植物的分类 | 第11-12页 |
| 0.2 猕猴桃主要的功能成份 | 第12-15页 |
| 0.2.1 维生素 | 第12-13页 |
| 0.2.2 膳食纤维 | 第13页 |
| 0.2.3 微量元素 | 第13页 |
| 0.2.4 多糖 | 第13-14页 |
| 0.2.5 抗氧化物质 | 第14-15页 |
| 0.3 植物抗坏血酸的研究现状 | 第15页 |
| 0.4 植物抗坏血酸过氧化物酶(APX)的研究现状 | 第15-16页 |
| 0.5 本文的研究目的和内容 | 第16-19页 |
| 第一章 不同品种猕猴桃的抗坏血酸(AsA)含量测定 | 第19-33页 |
| 第一节 材料与试剂 | 第19-20页 |
| 1.1.1 主要仪器设备 | 第19-20页 |
| 1.1.2 主要实验试剂 | 第20页 |
| 1.1.3 实验材料 | 第20页 |
| 第二节 实验方法 | 第20-21页 |
| 1.2.1 AsA含量的测定方法 | 第20页 |
| 1.2.2 AsA标准溶液的制备 | 第20-21页 |
| 1.2.3 猕猴桃供试样品的制备 | 第21页 |
| 第三节 实验结果 | 第21-30页 |
| 1.3.1 不同品种猕猴桃的形态特征比较 | 第21-23页 |
| 1.3.2 猕猴桃AsA的色谱条件测定结果 | 第23-26页 |
| 1.3.3 猕猴桃样品AsA含量 | 第26-30页 |
| 第四节 讨论 | 第30-33页 |
| 第二章 毛花猕猴桃cAPX基因克隆与生物信息学分析 | 第33-63页 |
| 第一节 材料与试剂 | 第33-36页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第33页 |
| 2.1.2 供试菌种 | 第33-34页 |
| 2.1.3 试剂 | 第34页 |
| 2.1.4 提取毛花猕猴桃RNA所需要试剂的配方 | 第34-35页 |
| 2.1.5 主要仪器设备 | 第35-36页 |
| 第二节 实验方法 | 第36-46页 |
| 2.2.1 毛花猕猴桃总RNA的提取 | 第36页 |
| 2.2.2 毛花猕猴桃总RNA的纯化 | 第36-37页 |
| 2.2.3 总RNA的质量检测 | 第37页 |
| 2.2.4 毛花猕猴桃cAPX基因的保守区扩增 | 第37-40页 |
| 2.2.4.1 cAPX基因保守区的引物设计 | 第37页 |
| 2.2.4.2 cAPX基因保守区的cDNA合成 | 第37-38页 |
| 2.2.4.3 cAPX基因保守区PCR的扩增 | 第38-39页 |
| 2.2.4.4 PCR产物目的片段回收纯化 | 第39页 |
| 2.2.4.5 目的片段连接 | 第39页 |
| 2.2.4.6 大肠杆菌感受态细胞的制备 | 第39-40页 |
| 2.2.4.7 转化大肠杆菌 | 第40页 |
| 2.2.4.8 菌液PCR鉴定 | 第40页 |
| 2.2.5 毛花猕猴桃cAPX基因cDNA 3’RACE扩增 | 第40-43页 |
| 2.2.6 毛花猕猴桃cAPX基因cDNA 5’RACE扩增 | 第43-46页 |
| 2.2.7 毛花猕猴桃cAPX基因全长序列的生物信息学分析 | 第46页 |
| 第三节 结果与分析 | 第46-58页 |
| 2.3.1 毛花猕猴桃总RNA的提取纯化结果 | 第46-48页 |
| 2.3.2 毛花猕猴桃cAPX基因保守区的扩增结果 | 第48-49页 |
| 2.3.3 毛花猕猴桃cAPX基因的3’RACE的扩增结果 | 第49-51页 |
| 2.3.4 毛花猕猴桃cAPX基因的5’RACE的扩增结果 | 第51-52页 |
| 2.3.5 毛花猕猴桃cAPX基因全长核苷酸序列获得与分析 | 第52-54页 |
| 2.3.6 毛花猕猴桃cAPX基因生物信息学分析 | 第54-58页 |
| 第四节 讨论 | 第58-63页 |
| 第三章 毛花猕猴桃SOD基因家族的片段克隆 | 第63-71页 |
| 第一节 材料与试剂 | 第63-64页 |
| 3.1.1 植物材料 | 第63页 |
| 3.1.2 供试菌种 | 第63-64页 |
| 3.1.3 试剂 | 第64页 |
| 3.1.4 提取RNA所需试剂配方 | 第64页 |
| 3.1.5 主要仪器 | 第64页 |
| 第二节 实验方法 | 第64-66页 |
| 3.2.1 毛花猕猴桃总RNA的提取与纯化 | 第64页 |
| 3.2.2 总RNA的质量检测 | 第64页 |
| 3.2.3 毛花猕猴桃SOD基因家族的保守区引物设计 | 第64-65页 |
| 3.2.4 毛花猕猴桃SOD基因家族的保守区cDNA合成 | 第65页 |
| 3.2.5 毛花猕猴桃SOD基因家族的保守区PCR的扩增 | 第65页 |
| 3.2.6 PCR产物目的片段回收纯化 | 第65页 |
| 3.2.7 目的片段连接 | 第65页 |
| 3.2.8 大肠杆菌感受态细胞的制备 | 第65页 |
| 3.2.9 转化大肠杆菌 | 第65页 |
| 3.2.10 菌液PCR鉴定 | 第65-66页 |
| 第三节 结果与分析 | 第66-69页 |
| 3.3.1 毛花猕猴桃Cu/Zn-SOD基因的保守区扩增结果 | 第66-67页 |
| 3.3.2 毛花猕猴桃Mn-SOD基因的保守区扩增结果 | 第67-69页 |
| 第四节 讨论 | 第69-71页 |
| 结论 | 第71-73页 |
| 参考文献 | 第73-79页 |
| 攻读硕士学位期间承担的科研任务 | 第79页 |
| 攻读硕士学位期间发表论文 | 第79-81页 |
| 致谢 | 第81-83页 |
| 个人简历 | 第83-85页 |
