中文摘要 | 第3-4页 |
Abstract | 第4-5页 |
第一章 绪论 | 第9-20页 |
1.1 引言 | 第9页 |
1.2 多溴联苯醚概述 | 第9-15页 |
1.2.1 多溴联苯醚的结构与性质 | 第9-10页 |
1.2.2 PBDEs的环境和生物分布 | 第10-12页 |
1.2.3 多溴联苯醚毒性效应 | 第12-15页 |
1.3 多溴联苯醚衍生物概述 | 第15-18页 |
1.3.1 羟基多溴联苯醚的来源、毒性及研究现状 | 第15-16页 |
1.3.2 多溴联苯醚醌类衍生物的来源、毒性及研究现状 | 第16-17页 |
1.3.3 甲氧基多溴联苯醚的来源、毒性及研究现状 | 第17-18页 |
1.4 本论文的研究目的及主要内容 | 第18-20页 |
第二章 羟基多溴联苯醚与人血清白蛋白相互作用性质研究 | 第20-33页 |
2.1 引言 | 第20-21页 |
2.2 实验部分 | 第21-23页 |
2.2.1 实验仪器 | 第21-22页 |
2.2.2 实验试剂 | 第22页 |
2.2.3 荧光滴定实验 | 第22页 |
2.2.4 利用探针确定结合位点 | 第22-23页 |
2.2.5 蛋白质二级结构的变化 | 第23页 |
2.2.6 OH-PBDEs对HSA生理功能的影响体外模拟 | 第23页 |
2.3 结果与讨论 | 第23-32页 |
2.3.1 4-OH-PBDE-42对HSA内源性荧光的猝灭作用 | 第23-24页 |
2.3.2 4-OH-BDE-42与HSA相互作用机理 | 第24-25页 |
2.3.3 4-OH-BDE-42与HSA相互作用常见参数的计算 | 第25-27页 |
2.3.4 结合位点确认 | 第27-28页 |
2.3.5 OH-PBDE对HSA二级结构的影响 | 第28-30页 |
2.3.6 HSA中色氨酸残基与4-OH-BDE-42之间的距离 | 第30-31页 |
2.3.7 4-OH-BDE-42对HSA生理功能的影响 | 第31-32页 |
2.4 本章小结 | 第32-33页 |
第三章 荧光竞争取代法检测OH-PBDEs与PDI的相互结合 | 第33-44页 |
3.1 引言 | 第33-34页 |
3.2 实验部分 | 第34-36页 |
3.2.1 实验仪器 | 第34页 |
3.2.2 化学试剂 | 第34-35页 |
3.2.3 荧光探针F-T3的合成 | 第35-36页 |
3.2.4 PDI与荧光探针的直接结合实验 | 第36页 |
3.2.5 OH-PBDEs的竞争性结合实验 | 第36页 |
3.3 结果与讨论 | 第36-43页 |
3.3.1 实验原理 | 第36-37页 |
3.3.2 可行性研究 | 第37页 |
3.3.3 反应时间的优化 | 第37-39页 |
3.3.4 荧光探针F-T3及PDI浓度的优化 | 第39页 |
3.3.5 荧光探针F-T3对PDI结构影响的分析 | 第39-40页 |
3.3.6 OH-PBDEs的竞争性取代 | 第40-41页 |
3.3.7 荧光探针F-T3选择性的考察 | 第41-43页 |
3.4 本章小结 | 第43-44页 |
第四章 利用DNA保护的AgNCs研究PBDE-Qs与GSH的相互作用 | 第44-56页 |
4.1 引言 | 第44-46页 |
4.2 实验部分 | 第46-47页 |
4.2.1 实验仪器 | 第46页 |
4.2.2 化学试剂 | 第46页 |
4.2.3 合成DNA保护的银纳米簇 | 第46-47页 |
4.2.4 PBDE-Qs对DNA保护的AgNCs的直接荧光猝灭实验 | 第47页 |
4.2.5 GSH与BQ反应导致AgNCs荧光恢复实验 | 第47页 |
4.2.6 选择性实验 | 第47页 |
4.3 结果与讨论 | 第47-55页 |
4.3.1 传感器的设计原理 | 第47-49页 |
4.3.2 DNA-AgNCs探针性能的分析 | 第49页 |
4.3.3 实验可行性分析 | 第49-50页 |
4.3.4 BQ对DNA-AgNCs荧光猝灭的条件优化 | 第50-51页 |
4.3.5 BQ浓度的优化 | 第51-52页 |
4.3.6 GSH存在时体系荧光恢复的条件优化 | 第52-53页 |
4.3.7 GSH浓度的定量分析 | 第53-55页 |
4.3.8 基于DNA-AgNCs的荧光传感器选择性考察 | 第55页 |
4.4 本章小结 | 第55-56页 |
结论与展望 | 第56-57页 |
参考文献 | 第57-69页 |
致谢 | 第69-70页 |
个人简历及在学期间发表的学术成果 | 第70页 |