中文摘要 | 第3-4页 |
ABSTRACT | 第4-5页 |
前言 | 第8-13页 |
1 破骨细胞 | 第8-10页 |
1.1 破骨细胞标志物 | 第9页 |
1.2 破骨细胞分化 | 第9-10页 |
2 叉头框转录因子(FOXO) | 第10-11页 |
2.1 FoxO与破骨细胞 | 第10页 |
2.2 FoxO与氧化应激 | 第10-11页 |
3 破骨细胞与活性氧 | 第11-13页 |
材料与方法 | 第13-27页 |
1 材料 | 第13-16页 |
1.1 实验细胞 | 第13页 |
1.2 实验试剂 | 第13-14页 |
1.3 实验仪器 | 第14页 |
1.4 主要试剂配制 | 第14-16页 |
2 实验方法 | 第16-27页 |
2.1 RAW264.7 细胞的复苏、培养、传代与冻存 | 第16-17页 |
2.2 FoxO1-siRNA转染RAW264.7 细胞及结果筛选 | 第17-22页 |
2.3 H_2O_2干预浓度的筛选 | 第22页 |
2.4 TRAP染色及破骨细胞标志物检测 | 第22-24页 |
2.5 细胞早期凋亡检测 | 第24页 |
2.6 细胞ROS、MDA、SOD、GSH-PX检测 | 第24-26页 |
2.7 统计学分析 | 第26-27页 |
实验结果 | 第27-36页 |
1 FOXO1-SIRNA的筛选 | 第27-30页 |
1.1 RAW264.7 细胞的正常形态 | 第27-28页 |
1.2 siRNA转染效率检测 | 第28页 |
1.3 各组细胞FoxO1mRNA的表达水平 | 第28-29页 |
1.4 各组细胞FoxO1蛋白的表达水平 | 第29-30页 |
2 不同浓度H_2O_2对RAW264.7 细胞活力的影响 | 第30-31页 |
3 FOXO1基因对RAW264.7 细胞破骨分化的影响 | 第31-33页 |
3.1 诱导破骨分化后TRAP染色结果 | 第31-32页 |
3.2 破骨细胞标志基因表达的变化 | 第32-33页 |
4 FOXO1基因对RAW264.7 细胞早期凋亡的干预作用 | 第33页 |
5 氧化指标与抗氧化指标检测 | 第33-36页 |
讨论 | 第36-40页 |
1 破骨前体细胞系的选择 | 第36页 |
2 RAW264.7 细胞FOXO1基因沉默模型的建立 | 第36-37页 |
3 RAW264.7 细胞高ROS状态 | 第37-38页 |
3.1 H_2O_2干预RAW264.7 细胞所致高ROS状态 | 第37页 |
3.2 FoxO1基因沉默所致RAW264.7 细胞高ROS状态 | 第37-38页 |
4 FOXO1基因对RAW264.7 细胞破骨分化及凋亡的影响 | 第38-40页 |
结论 | 第40-41页 |
参考文献 | 第41-45页 |
附录 | 第45-49页 |
中英文缩略词表 | 第49-50页 |
在校期间研究成果 | 第50-51页 |
致谢 | 第51页 |