| 摘要 | 第7-10页 |
| ABSTRACT | 第10-12页 |
| 英文缩略符及其中英文对照表 | 第13-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-34页 |
| 1. 植物磷素营养的生理功能 | 第15页 |
| 2. 土壤中磷素资源的含量及利用现状 | 第15-16页 |
| 3. 植物对低磷胁迫的适应机制 | 第16-22页 |
| 3.1 植物根系形态上的适应 | 第17-18页 |
| 3.2 形成丛枝菌根 | 第18-20页 |
| 3.3 对根际难溶性磷的活化 | 第20-22页 |
| 4. 植物对磷素营养的吸收运输系统-磷转运蛋白 | 第22-28页 |
| 4.1 Pht1家族磷转运蛋白 | 第23-26页 |
| 4.2 Pht2家族磷转运蛋白 | 第26-27页 |
| 4.3 其它家族的磷转运蛋白 | 第27-28页 |
| 5. 植物中缺磷信号的传导及分子调控 | 第28-32页 |
| 5.1 PHR1介导的植物缺磷信号的调控 | 第29-30页 |
| 5.2 miR399参与的磷信号的调控 | 第30-32页 |
| 5.3 其它代谢途径的调控 | 第32页 |
| 6. 结语 | 第32-34页 |
| 第二章 辣椒、茄子和烟草Pht1家族基因的克隆及生物信息学分析 | 第34-48页 |
| 1. 引言 | 第34页 |
| 2. 材料与方法 | 第34-36页 |
| 2.1 作物材料 | 第34-35页 |
| 2.2 菌种及克隆载体 | 第35页 |
| 2.3 DNA提取 | 第35页 |
| 2.4 PCR反应及引物 | 第35页 |
| 2.5 PCR产物测序 | 第35页 |
| 2.6 RNA提取和RACE-PCR扩增 | 第35页 |
| 2.7 序列分析 | 第35-36页 |
| 2.8 Southern Blot杂交 | 第36页 |
| 3. 结果与分析 | 第36-46页 |
| 3.1 茄子、辣椒和烟草Pht1基因片段的分离 | 第36-37页 |
| 3.2 茄子、辣椒和烟草Pht1基因全长cDNA的克隆 | 第37-38页 |
| 3.3 茄子、辣椒和烟草Pht1基因的序列分析 | 第38-43页 |
| 3.4 茄子、辣椒和烟草Pht1基因的结构功能域分析 | 第43-45页 |
| 3.5 磷转运蛋白基因的Southern杂交分析 | 第45-46页 |
| 4. 讨论 | 第46-48页 |
| 第三章 磷饥饿及恢复供磷对茄子、辣椒和烟草生长及Pht1基因表达的影响 | 第48-57页 |
| 1. 引言 | 第48-49页 |
| 2. 材料与方法 | 第49-50页 |
| 2.1 植物材料与生长条件 | 第49页 |
| 2.2 植株收获及采样 | 第49页 |
| 2.3 植株全磷的测定 | 第49页 |
| 2.4 RNA提取及反转录 | 第49页 |
| 2.5 半定量RT-PCR及引物 | 第49-50页 |
| 3. 结果与分析 | 第50-54页 |
| 3.1 磷饥饿对茄子、辣椒和烟草生长的影响 | 第50-52页 |
| 3.2 磷饥饿及恢复供磷对茄子、辣椒和烟草Pht1基因表达的影响 | 第52-54页 |
| 4. 讨论 | 第54-57页 |
| 第四章 丛枝菌根对茄子、辣椒和烟草的生长及,Pht1基因表达的影响 | 第57-69页 |
| 1. 引言 | 第57-58页 |
| 2. 材料与方法 | 第58-60页 |
| 2.1 植物材料与生长条件 | 第58页 |
| 2.2 供试菌种 | 第58页 |
| 2.3 植株收获及采样 | 第58页 |
| 2.4 植株全磷的测定 | 第58-59页 |
| 2.5 可溶性糖的测定 | 第59页 |
| 2.6 菌根真菌侵染率的测定 | 第59页 |
| 2.7 RNA提取及cDNA的合成 | 第59页 |
| 2.8 RT-PCR反应及引物 | 第59页 |
| 2.9 实时荧光定量PCR及引物 | 第59-60页 |
| 3. 结果与分析 | 第60-66页 |
| 3.1 菌根对茄子、辣椒和烟草生长的影响 | 第60-61页 |
| 3.2 菌根对茄子、辣椒和烟草磷吸收的影响 | 第61-62页 |
| 3.3 菌根对茄子、辣椒和烟草可溶性糖的影响 | 第62-63页 |
| 3.4 菌根对茄子、辣椒和烟草磷转运体基因表达的影响 | 第63-66页 |
| 4. 讨论 | 第66-69页 |
| 4.1 丛枝菌根对茄子、辣椒和烟草营养生长的影响 | 第66-67页 |
| 4.2 丛枝菌根对茄子、辣椒和烟草Phtl基因表达的影响 | 第67-69页 |
| 第五章 茄子和烟草Pht1；3、Pht1；4及Pht1；5基因的时空表达模式分析 | 第69-81页 |
| 1. 引言 | 第69页 |
| 2. 材料与方法 | 第69-72页 |
| 2.1 作物材料 | 第69-70页 |
| 2.2 茄子和烟草Pht1；3,Pht1；4及Pht1；5启动子的分离 | 第70页 |
| 2.3 启动子片段融合pBI121表达载体的构建 | 第70页 |
| 2.4 农杆菌介导的烟草的转化 | 第70-72页 |
| 3. 结果与分析 | 第72-79页 |
| 3.1 Pht1；3,Pht1；4及Pht1；5启动子片段的分离 | 第72-74页 |
| 3.2 Pht1；3,Pht1；4及Pht1；5启动子与GUS基因融合 | 第74-77页 |
| 3.3 Pht1；3,Pht1；4及Pht1；5组织特异性分析 | 第77-79页 |
| 4. 讨论 | 第79-81页 |
| 第六章 茄科植物Pht1；3,Pht1；4和Pht1；5启动子的调控机制分析 | 第81-98页 |
| 1. 引言 | 第81-82页 |
| 2. 材料与方法 | 第82-84页 |
| 2.1 供试材料 | 第82页 |
| 2.2 启动子片段的生物信息学分析 | 第82页 |
| 2.3 Pht1；3-1；5启动子不同缺失片段融合GUS表达载体的构建 | 第82页 |
| 2.4 酵母单杂交 | 第82-84页 |
| 3. 结果与分析 | 第84-93页 |
| 3.1 Pht1；3,Pht1；4及Pht1；5启动子的结构分析 | 第84-86页 |
| 3.2 含有不同长度Pht1；3-5启动子融合GUS的转基因烟草的获得 | 第86-87页 |
| 3.3 启动子的不同缺失突变体驱动GUS基因表达活性的检测 | 第87-89页 |
| 3.4 与Myc-box基序(motif)结合的转录因子的克隆 | 第89-93页 |
| 4. 讨论 | 第93-98页 |
| 第七章 全文结论 | 第98-100页 |
| 参考文献 | 第100-121页 |
| 创新点 | 第121-122页 |
| 附录 | 第122-152页 |
| 在读期间发表的论文 | 第152-153页 |
| 致谢 | 第153页 |
