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CD137分子对小鼠血管钙化的影响

摘要第5-7页
Abstract第7-8页
常用缩略语中英文对照表第12-14页
第一章 绪论第14-21页
    1.1 研究背景第14-19页
        1.1.1 动脉粥样硬化的发生和发展第14-15页
        1.1.2 血管钙化与动脉粥样硬化第15-17页
        1.1.3 炎症在血管钙化形成中的作用第17-18页
        1.1.4 CD137研究现状第18-19页
    1.2 本研究的目的意义第19页
    1.3 主要研究内容和技术路线第19-21页
        1.3.1 研究内容第19-20页
        1.3.2 技术路线图第20-21页
第二章 CD137对ApoE~(-/-)小鼠粥样斑块钙化的影响第21-32页
    2.1 实验动物和材料第21-22页
        2.1.1 实验动物及饲料第21页
        2.1.2 实验试剂及其配制第21-22页
        2.1.3 实验仪器第22页
    2.2 实验方法第22-26页
        2.2.1 实验动物饲养第22页
        2.2.2 实验动物分组及处理第22-23页
        2.2.3 组织收集与切片制备第23-24页
        2.2.4 苏木精&伊红染色(H&E染色)第24页
        2.2.5 Masson三色染色第24页
        2.2.6 Von kossa染色第24-25页
        2.2.7 ALP染色第25页
        2.2.8 免疫组织化学染色第25-26页
    2.3 统计学分析方法第26页
    2.4 实验结果第26-30页
        2.4.1 干预CD137后ApoE~(-/-)小鼠主动脉组织形态学变化第26页
        2.4.2 干预CD137对ApoE~(-/-)小鼠主动脉粥样斑块钙化的影响第26-27页
        2.4.3 干预CD137后ApoE~(-/-)小鼠主动脉管壁肌纤维分布变化第27-28页
        2.4.4 干预CD137后ApoE~(-/-)小鼠主动脉ALP表达及分布第28页
        2.4.5 干预CD137对ApoE~(-/-)小鼠主动脉BMP-2、Runx2表达的影响第28-30页
    2.5 讨论第30-32页
第三章 CD137对小鼠血管平滑肌细胞钙化的影响第32-47页
    3.1 材料第32-34页
        3.1.1 实验动物第32页
        3.1.2 试剂及耗材第32-34页
    3.2 实验方法第34-41页
        3.2.1 小鼠主动脉VSMCs分离、培养及鉴定第34-35页
        3.2.2 细胞处理及分组第35页
        3.2.3 Von kosssa染色第35-36页
        3.2.4 细胞内钙离子含量定量测试第36页
        3.2.5 VSMCs上清液碱性磷酸酶(ALP)活性测定第36-37页
        3.2.6 RT-PCR检测目的基因mRNA表达水平第37-39页
        3.2.7 细胞蛋白提取及免疫印迹(Western blot)第39-41页
    3.3 统计学方法第41-42页
    3.4 结果第42-45页
        3.4.1 VSMCs鉴定第42页
        3.4.2 干预CD137对VSMCs钙化的影响第42-43页
        3.4.3 干预CD137对VSMCs钙含量及ALP活性的影响第43页
        3.4.4 干预CD137对VSMCs骨形成相关基因表达的影响第43-44页
        3.4.5 干预CD137对VSMCs骨形成相关蛋白表达的影响第44-45页
    3.5 讨论第45-47页
第四章 结论第47-48页
参考文献第48-52页
综述第52-66页
    参考文献第61-66页
致谢第66-67页
在学期间发表的学术论文第67页

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