| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 英文缩略表 | 第12-13页 |
| 内容提要 | 第13-15页 |
| 第1章 文献综述 | 第15-25页 |
| 1.1 精神分裂症概况 | 第15页 |
| 1.2 精神分裂症病因 | 第15-16页 |
| 1.2.1 遗传学因素 | 第15-16页 |
| 1.2.2 表观遗传学因素 | 第16页 |
| 1.3 表观遗传学与精神分裂症的关系 | 第16-19页 |
| 1.3.1 DNA甲基化 | 第17页 |
| 1.3.2 DNA甲基化与精神分裂症的关系 | 第17-18页 |
| 1.3.3 组蛋白乙酰化 | 第18页 |
| 1.3.4 组蛋白乙酰化与精神分裂症的关系 | 第18-19页 |
| 1.4 精神分裂症的药物治疗 | 第19-20页 |
| 1.5 组蛋白去乙酰化酶抑制剂 | 第20-21页 |
| 1.5.1 HDACi丁酸钠在神经系统中的作用 | 第20-21页 |
| 1.6 电离辐射与HDACI的相互作用 | 第21-22页 |
| 1.7 精神分裂症动物模型简介 | 第22-23页 |
| 1.7.1 经典精神分裂症大鼠动物模型 | 第22页 |
| 1.7.2 表观遗传大鼠动物模型 | 第22-23页 |
| 1.7.3 精神分裂症表观遗传大鼠模型 | 第23页 |
| 1.8 立题依据 | 第23-25页 |
| 第2章 材料与方法 | 第25-34页 |
| 2.1 主要试剂及仪器 | 第25-26页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第25-26页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第26页 |
| 2.1.3 实验耗材 | 第26页 |
| 2.2 实验材料及方法 | 第26-28页 |
| 2.2.1 实验大鼠模型的制备 | 第26-27页 |
| 2.2.2 照射条件与方式 | 第27-28页 |
| 2.2.3 Morris水迷宫实验 | 第28页 |
| 2.3 RNA的提取及浓度测定 | 第28-30页 |
| 2.3.1 脑组织提取 | 第28-29页 |
| 2.3.2 RNA的提取及测定 | 第29-30页 |
| 2.4 目的基因的选择 | 第30-34页 |
| 2.4.1 设计、合成引物 | 第30-31页 |
| 2.4.2 引物的处理 | 第31-32页 |
| 2.4.3 cDNA的处理 | 第32页 |
| 2.4.4 基因表达 | 第32-34页 |
| 第3章 结果 | 第34-59页 |
| 3.1 Morris水迷宫实验结果 | 第34-35页 |
| 3.2 Real-timePCR方法检测目的基因的表达 | 第35-39页 |
| 3.2.1 熔解曲线 | 第35-36页 |
| 3.2.2 标准曲线 | 第36-39页 |
| 3.3 目的基因MRNA表达情况分析 | 第39-59页 |
| 3.3.1 Bdnf4基因 | 第39-41页 |
| 3.3.2 Disc1基因 | 第41-43页 |
| 3.3.3 Dnmt3a基因 | 第43-46页 |
| 3.3.4 Grm2基因 | 第46-48页 |
| 3.3.5 Grm3基因 | 第48-50页 |
| 3.3.6 Hdac2基因 | 第50-52页 |
| 3.3.7 Hdac3基因 | 第52-54页 |
| 3.3.8 Mecp2基因 | 第54-56页 |
| 3.3.9 RELN基因 | 第56-59页 |
| 第4章 讨论 | 第59-69页 |
| 4.1 Morris水迷宫实验结果分析 | 第60页 |
| 4.2 目的基因mRNA表达结果分析 | 第60-67页 |
| 4.2.1 Bdnf4基因 | 第60-61页 |
| 4.2.2 Disc1基因 | 第61-62页 |
| 4.2.3 Dnmt3a基因 | 第62页 |
| 4.2.4 Grm2基因、Grm3基因 | 第62-63页 |
| 4.2.5 Hdac2基因、Hdac3基因 | 第63-64页 |
| 4.2.6 Mecp2基因 | 第64-65页 |
| 4.2.7 RELN基因 | 第65-66页 |
| 4.2.8 目的基因可能的作用机制 | 第66-67页 |
| 4.3 丁酸钠与目的基因间用关系 | 第67页 |
| 4.4 电离辐射对目的基因的影响 | 第67-69页 |
| 第5章 结论 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-82页 |
| 攻读硕士期间所发表的论文 | 第82-83页 |
| 致谢 | 第83页 |