| 中文摘要 | 第3-6页 |
| 英文摘要 | 第6-9页 |
| 缩略词 | 第12-13页 |
| 1 绪论 | 第13-25页 |
| 1.1 引言 | 第13-14页 |
| 1.2 国内外研究现状 | 第14-21页 |
| 1.2.1 芫菁科昆虫及斑蝥素的药用用途 | 第14页 |
| 1.2.2 斑蝥素的结构与性质 | 第14-15页 |
| 1.2.3 斑蝥素的人工化学合成 | 第15页 |
| 1.2.4 芫菁体内斑蝥素的含量及其转运 | 第15-17页 |
| 1.2.5 斑蝥素的提取及含量测定 | 第17-18页 |
| 1.2.6 斑蝥素的生物学功能 | 第18-19页 |
| 1.2.7 斑蝥素生物合成途径研究进展 | 第19-21页 |
| 1.3 研究目的、意义及内容 | 第21-25页 |
| 1.3.1 研究目的、意义 | 第21页 |
| 1.3.2 主要研究内容 | 第21-22页 |
| 1.3.3 技术路线 | 第22-23页 |
| 1.3.4 创新性分析 | 第23-25页 |
| 2 眼斑芫菁转录组de novo测序及数字基因表达谱分析 | 第25-55页 |
| 2.1 引言 | 第25-26页 |
| 2.2 材料与方法 | 第26-34页 |
| 2.2.1 材料 | 第26-27页 |
| 2.2.2 试验方法 | 第27-34页 |
| 2.3 结果及分析 | 第34-53页 |
| 2.3.1 转录组测序及从头 (de novo) 拼接 | 第34-38页 |
| 2.3.2 转录组测序功能注释及蛋白编码框 (CDS)的预测 | 第38-41页 |
| 2.3.3 数字基因表达谱 (RNA-seq)测序 | 第41-46页 |
| 2.3.4 斑蝥素合成相关基因及通路的鉴定 | 第46-51页 |
| 2.3.5 部分差异表达基因的RT-qPCR验证 | 第51-53页 |
| 2.4 本章讨论 | 第53-55页 |
| 3 眼斑芫菁斑蝥素合成相关基因的克隆及序列分析 | 第55-85页 |
| 3.1 引言 | 第55-56页 |
| 3.2 材料与方法 | 第56-65页 |
| 3.2.1 材料 | 第56-57页 |
| 3.2.2 试验方法 | 第57-65页 |
| 3.3 结果与分析 | 第65-83页 |
| 3.3.1 McSTE24基因的克隆及生物信息学分析 | 第65-71页 |
| 3.3.2 McCYP305a1基因的克隆及生物信息学分析 | 第71-77页 |
| 3.3.3 McJHEH基因的克隆及生物信息学分析 | 第77-83页 |
| 3.4 本章讨论 | 第83-85页 |
| 4 眼斑芫菁斑蝥素合成相关基因的表达模式分析 | 第85-93页 |
| 4.1 引言 | 第85页 |
| 4.2 材料与方法 | 第85页 |
| 4.2.1 材料 | 第85页 |
| 4.2.2 试验方法 | 第85页 |
| 4.3 结果与分析 | 第85-90页 |
| 4.3.1 雄成虫不同时期McSTE24、McCYP305a1及McJHEH的基因表达模式分析 | 第85-86页 |
| 4.3.2 雌成虫不同时期McSTE24、McCYP305a1及McJHEH的基因表达模式分析 | 第86-88页 |
| 4.3.3 雌、雄成虫斑蝥素大量合成前期及合成高峰期McSTE24、McCYP305a1及McJHEH基因的差异表达分析 | 第88-90页 |
| 4.4 本章讨论 | 第90-93页 |
| 5 眼斑芫菁斑蝥素合成相关基因的RNA干扰 | 第93-107页 |
| 5.1 引言 | 第93页 |
| 5.2 材料与方法 | 第93-98页 |
| 5.2.1 材料 | 第93-94页 |
| 5.2.2 试验方法 | 第94-98页 |
| 5.3 结果与分析 | 第98-105页 |
| 5.3.1 RNA干扰效率的检测 | 第98-100页 |
| 5.3.2 RNA干扰对眼斑芫菁体内斑蝥素合成的影响 | 第100-102页 |
| 5.3.3 RNA干扰对下游基因表达量的影响 | 第102-105页 |
| 5.4 本章讨论 | 第105-107页 |
| 6 全文讨论 | 第107-113页 |
| 7 结论与展望 | 第113-115页 |
| 7.1 主要结论 | 第113页 |
| 7.2 展望 | 第113-115页 |
| 致谢 | 第115-117页 |
| 参考文献 | 第117-127页 |
| 附录 | 第127页 |
| 作者在攻读博士学位期间发表的论文 | 第127页 |
