缩略语表 | 第6-8页 |
英文摘要 | 第8-14页 |
中文摘要 | 第15-20页 |
前言 | 第20-22页 |
第一部分 人真皮三维重建 | 第22-43页 |
第一章 研究背景 | 第22-24页 |
第二章 材料方法 | 第24-38页 |
2.1 实验材料 | 第24-25页 |
2.2 获取组织切片的全景图像 | 第25-28页 |
2.3 三维重建 | 第28-32页 |
2.4 真皮亚区域(subregion)纤维分布的研究 | 第32-35页 |
2.5 用micro-CT获得人脱细胞真皮(ADM)中孔隙率,孔径和孔壁厚度 | 第35-37页 |
2.6 统计学方法 | 第37-38页 |
第三章 实验结果 | 第38-42页 |
3.1 人真皮三维重建电子模型 | 第38页 |
3.2 人真皮靠近毛囊区和远离毛囊区纤维分布的差异 | 第38-39页 |
3.3 人真皮不同深度纤维分布的差异 | 第39-40页 |
3.4 H&E、Masson’s trichrome染色和扫描电镜图片 | 第40-41页 |
3.5 Micro-CT测定人脱细胞真皮的孔隙率、孔径和孔壁厚度 | 第41-42页 |
第四章 讨论 | 第42-43页 |
第二部分 基于人真皮显微三维立体图的“Sandwich”结构的仿生人工真皮的制备,及其对创面愈合的影响 | 第43-65页 |
第一章 研究背景 | 第43-44页 |
第二章 材料方法 | 第44-54页 |
2.1 实验材料和新生小鼠成纤维细胞的分离培养 | 第44-46页 |
2.2 制作不同孔径的单层胶原支架 | 第46-47页 |
2.3 单层胶原支架孔径测量 | 第47-48页 |
2.4 支架体外生物降解检测 | 第48页 |
2.5 培养和接种小鼠成纤维细胞 | 第48页 |
2.6 细胞在支架中的分布研究 | 第48-49页 |
2.7 细胞增殖检测 | 第49页 |
2.8 含细胞的单层胶原支架动物实验 | 第49-50页 |
2.9 含细胞的三层胶原膜(“Sandwich”and“Homogeneous”structures)的制备及动物实验 | 第50-51页 |
2.10 创面愈合检测 | 第51页 |
2.11 HE和Masson染色 | 第51页 |
2.12 免疫组化 | 第51-52页 |
2.13 Western blotting | 第52-54页 |
第三章 实验结果 | 第54-63页 |
3.1 孔径对单层胶原膜降解、细胞粘附和增殖的影响 | 第54-55页 |
3.2 孔径对单层胶原膜创面愈合性能的影响 | 第55-58页 |
3.3“Sandwich”结构的仿生人工真皮促进小鼠创面愈合 | 第58-61页 |
3.4“Sandwich”结构的仿生人工真皮促进小鼠创面细胞增殖 | 第61-62页 |
3.5 166.9/87.7/166.9 μm孔径梯度的“Sandwich”人工支架显著促进了细胞增殖 | 第62-63页 |
第四章 讨论 | 第63-65页 |
第三部分 可控性释放血管活性肠肽(VIP)的聚己内酯(PCL)纳米纤维膜的制备,及其对体外培养细胞增殖的影响 | 第65-79页 |
第一章 研究背景 | 第65-67页 |
第二章 实验材料和方法 | 第67-73页 |
2.1 材料和动物 | 第67-69页 |
2.2 制作PCL-DA-VIP纳米纤维膜 | 第69-70页 |
2.3 VIP释放曲线测量 | 第70页 |
2.4 成纤维细胞的原代培养 | 第70-71页 |
2.5 细胞体外增殖曲线 | 第71-72页 |
2.6 统计学方法 | 第72-73页 |
第三章 实验结果 | 第73-78页 |
3.1 丙酮处理后在纳米膜上原位生成微胶囊 | 第73-74页 |
3.2 载药率(LC)和包封率(EE) | 第74-75页 |
3.3 微胶囊的形成延长了VIP的释放时间 | 第75页 |
3.4 体外增殖实验证明VIP的可控性释放显著提高细胞增殖率 | 第75-78页 |
第四章 讨论 | 第78-79页 |
全文结论 | 第79-80页 |
参考文献 | 第80-86页 |
文献综述一 Three-dimensional reconstruction of light microscopy image sections: present and future | 第86-122页 |
参考文献 | 第114-122页 |
文献综述二 组织工程皮肤和难愈合性创面治疗 | 第122-137页 |
参考文献 | 第133-137页 |
以第一作者发表的文章、专利 | 第137-138页 |
致谢 | 第138页 |