| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-12页 |
| 第一章 前言 | 第12-21页 |
| 1. 自身免疫性疾病 | 第12-15页 |
| ·概述 | 第12-13页 |
| ·自身免疫性疾病的决定因素 | 第13-15页 |
| 2. 免疫细胞 | 第15-17页 |
| ·免疫异常与AID的关系 | 第15-16页 |
| ·多发性硬化症中的免疫细胞 | 第16-17页 |
| 3. 嘌呤类受体 | 第17-18页 |
| ·概述 | 第17-18页 |
| ·嘌呤受体与MS的关系 | 第18页 |
| 4. 树突状细胞 | 第18-20页 |
| ·树突状细胞与EAE | 第19页 |
| ·树突状细胞与银屑病 | 第19-20页 |
| ·树突状细胞与Ⅰ型糖尿病 | 第20页 |
| ·树突状细胞和系统性红斑狼疮 | 第20页 |
| 结语 | 第20-21页 |
| 第二章 P2Y12基因对EAE小鼠发病影响的研究 | 第21-38页 |
| 引言 | 第21-22页 |
| 材料 | 第22-25页 |
| 1. 实验动物 | 第22页 |
| 2. 主要试剂 | 第22-23页 |
| 3. 实验器材 | 第23页 |
| 4. 主要仪器 | 第23页 |
| 5. 试剂配制 | 第23-25页 |
| 方法 | 第25-32页 |
| 1. P2Y12基因敲除小鼠繁殖与鉴定 | 第25-27页 |
| 2. EAE动物模型的构建及评分 | 第27页 |
| 3. 小鼠脊髓组织取材以及病理染色 | 第27-30页 |
| 4. 脾淋巴细胞的分离与流式检测 | 第30页 |
| 5. 小鼠血清分离和细胞因子ELISA检测 | 第30-32页 |
| 结果 | 第32-36页 |
| 1. P2Y12基因在EAE小鼠中表达水平的检测 | 第32页 |
| 2. P2Y12基因敲除EAE小鼠的临床评分 | 第32-33页 |
| 3. P2Y12基因敲除EAE小鼠的病理学分析 | 第33-34页 |
| 4. P2Y12基因敲除EAE小鼠脾细胞亚群的检测 | 第34-35页 |
| 5. P2Y12基因敲除EAE小鼠血清中细胞因子表达的检测 | 第35-36页 |
| 讨论 | 第36-38页 |
| 第三章 P2Y12基因对CD4~+T细胞功能影响的研究 | 第38-51页 |
| 引言 | 第38页 |
| 材料 | 第38-41页 |
| 1. 实验动物 | 第38-39页 |
| 2. 主要试剂 | 第39页 |
| 3. 实验器材 | 第39页 |
| 4. 主要仪器 | 第39页 |
| 5. 试剂配制 | 第39-41页 |
| 方法 | 第41-44页 |
| 1. 脾脏中T细胞及其亚群的检测 | 第41-42页 |
| 2. Naive CD4~+T细胞分选及体外分化 | 第42-43页 |
| 3. Naive CD4~+T细胞体外增殖 | 第43-44页 |
| 结果 | 第44-49页 |
| 1. P2Y12基因缺失小鼠的T细胞亚群检测 | 第44-47页 |
| 2. P2Y12基因缺失对CD4~+T细胞体外分化的影响 | 第47-48页 |
| 3. P2Y12基因缺失对CD4~+T细胞增殖能力的影响 | 第48-49页 |
| 讨论 | 第49-51页 |
| 第四章 P2Y12基因对树突状细胞功能影响的研究 | 第51-64页 |
| 引言 | 第51-52页 |
| 材料 | 第52-53页 |
| 1. 实验动物 | 第52页 |
| 2. 主要试剂 | 第52页 |
| 3. 实验器材 | 第52页 |
| 4. 主要仪器 | 第52-53页 |
| 5. 试剂配制 | 第53页 |
| 方法 | 第53-58页 |
| 1. 小鼠骨髓来源树突状细胞(BMDCs)的制备和纯度检测 | 第53-54页 |
| 2. BMDC细胞因子表达水平的检测 | 第54-57页 |
| 3. BMDC表面分子的检测 | 第57页 |
| 4. BMDC培养上清和CD4~+T细胞共培养实验 | 第57-58页 |
| 结果 | 第58-62页 |
| 1. 骨髓来源树突状细胞BMDC纯度的检测 | 第58页 |
| 2. P2Y12基因缺失对DC表面分子表达的影响 | 第58-59页 |
| 3. P2Y12基因缺失对DC细胞因子表达的影响 | 第59-60页 |
| 4. P2Y12基因缺失对DC诱导的CD4~+T细胞分化的影响 | 第60-62页 |
| 讨论 | 第62-64页 |
| 结论 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-77页 |
| 综述 | 第77-88页 |
| 参考文献 | 第83-88页 |
| 致谢 | 第88页 |
