| 摘要 | 第1-11页 |
| ABSTRACT | 第11-17页 |
| 目录 | 第17-21页 |
| 第一章 绪论 | 第21-36页 |
| ·Th1/Th2概述及其与肿瘤关系 | 第22-24页 |
| ·Th1/Th2特异性转录因子 | 第24-27页 |
| ·T-bet及其调节作用 | 第24-25页 |
| ·GATA-3及其调节作用 | 第25-26页 |
| ·与Th1/Th2有关的肿瘤免疫治疗 | 第26-27页 |
| ·Th17细胞及其与肿瘤的关系 | 第27-35页 |
| ·Th17细胞的生物学特征 | 第28-31页 |
| ·正向调节 | 第30-31页 |
| ·负向调节 | 第31页 |
| ·Th17细胞与肿瘤的关系 | 第31-34页 |
| ·Th17细胞的抑瘤作用 | 第31-32页 |
| ·Th17细胞的促瘤作用 | 第32-34页 |
| ·Th17细胞在肿瘤微环境中聚集的机制 | 第34-35页 |
| ·肿瘤微环境诱导促进Th17细胞分化 | 第34页 |
| ·肿瘤微环境对Th17细胞的趋化作用 | 第34-35页 |
| ·本研究的目的与意义 | 第35-36页 |
| 第二章 食管癌患者Th1/Th2平衡的变化及临床意义 | 第36-51页 |
| 前言 | 第36页 |
| ·材料和方法 | 第36-38页 |
| ·材料 | 第36-38页 |
| ·病例入组条件 | 第36页 |
| ·分组标准 | 第36-37页 |
| ·一般资料 | 第37页 |
| ·主要仪器和设备 | 第37-38页 |
| ·主要试剂和材料 | 第38页 |
| ·实验方法 | 第38-41页 |
| ·外周血单个核细胞的分离 | 第38-39页 |
| ·PCR试验前的准备 | 第39页 |
| ·总RNA的提取 | 第39-40页 |
| ·逆转录cDNA | 第40页 |
| ·RT-qPCR反应 | 第40页 |
| ·ELISA法检测细胞因子 | 第40-41页 |
| ·统计学方法 | 第41页 |
| ·结果 | 第41-47页 |
| ·食管癌患者Th1/Th2型转录因子和细胞因子表达水平的改变 | 第41-42页 |
| ·不同临床病理因素食管癌患者Th1/Th2转录因子和细胞因子表达 | 第42-47页 |
| ·食管癌患者PBMC中T-bet/GATA-3与血浆中Th1/Th2型细胞因子的相关性分析 | 第47页 |
| ·讨论 | 第47-50页 |
| ·食管癌与Th1/Th2漂移 | 第47-49页 |
| ·食管癌患者Th1/Th2转录因子和细胞因子的表达与临床病理因素的相关性 | 第49页 |
| ·T-bet/GATA-3比值在评价食管癌患者抗肿瘤免疫水平中的作用 | 第49-50页 |
| ·小结 | 第50-51页 |
| 第三章 放疗对食管癌患者外周血Th1/Th2漂移的影响及艾迪注射液的调节作用 | 第51-65页 |
| 前言 | 第51页 |
| ·材料和方法 | 第51-55页 |
| ·材料 | 第51-53页 |
| ·病例入组条件 | 第51页 |
| ·一般资料 | 第51-52页 |
| ·分组标准 | 第52页 |
| ·主要仪器和设备 | 第52-53页 |
| ·主要试剂和材料 | 第53页 |
| ·实验方法 | 第53页 |
| ·治疗方法 | 第53-54页 |
| ·单放组:三维适形放射治疗(3D-CRT) | 第53-54页 |
| ·艾迪组:三维适形放疗+同期静点艾迪注射液 | 第54页 |
| ·评价标准 | 第54页 |
| ·统计学方法 | 第54-55页 |
| ·结果 | 第55-59页 |
| ·单放组和艾迪组治疗前后Th1/Th2转录因子和细胞因子的表达 | 第55-58页 |
| ·单放组和艾迪组治疗后近期疗效 | 第58页 |
| ·单放组和艾迪组治疗后放射性食管炎发生率 | 第58页 |
| ·单放组和艾迪组治疗后白细胞减少发生率 | 第58-59页 |
| ·讨论 | 第59-64页 |
| ·放射治疗对食管癌患者Th1/Th2漂移的影响 | 第59-60页 |
| ·目前肿瘤患者Th1/Th2纠偏的免疫治疗 | 第60-61页 |
| ·艾迪注射液对Th1/Th2漂移的调节作用 | 第61-62页 |
| ·艾迪注射液对食管癌患者近期疗效及毒副反应发生率的影响 | 第62-64页 |
| ·小结 | 第64-65页 |
| 第四章 食管癌NK、γδT细胞水平的变化以及与ULBP3的关系 | 第65-79页 |
| 前言 | 第65页 |
| ·材料与方法 | 第65-71页 |
| ·材料 | 第65-66页 |
| ·标本来源 | 第65-66页 |
| ·主要试剂与仪器 | 第66页 |
| ·实验方法 | 第66-71页 |
| ·细胞分离 | 第66-67页 |
| ·细胞染色 | 第67页 |
| ·流式细胞仪测定 | 第67页 |
| ·实时荧光定量PCR检测肿瘤、癌旁组织中ULBP3 mRNA | 第67-69页 |
| ·免疫组织化学染色法检测ULBP3蛋白表达 | 第69-70页 |
| ·Wsetern blot法检测ULBP3蛋白表达 | 第70-71页 |
| ·统计学方法 | 第71页 |
| ·结果 | 第71-76页 |
| ·NK细胞的流式检测结果 | 第71页 |
| ·γδ T细胞的流式检测 | 第71-72页 |
| ·食管癌肿瘤组织中ULBP3 mRNA的表达 | 第72-74页 |
| ·免疫组织化学染色法检测ULBP3蛋白的表达 | 第74-75页 |
| ·Western blot检测ULBP3蛋白的表达 | 第75页 |
| ·NK细胞的含量及ULBP3 mRNA与NK细胞的相关性 | 第75-76页 |
| ·讨论 | 第76-79页 |
| 第五章 食管癌患者肿瘤微环境中Th17细胞的分布、机制以及与临床的关系 | 第79-89页 |
| 前言 | 第79页 |
| ·材料和方法 | 第79-81页 |
| ·材料 | 第79-80页 |
| ·标本来源 | 第79页 |
| ·主要试剂与仪器 | 第79-80页 |
| ·实验方法 | 第80-81页 |
| ·组织局部TIL、NTL及外周血PBMC制备 | 第80页 |
| ·流式细胞术检测Th17细胞 | 第80页 |
| ·RT-qPCR检测肿瘤组织中CCL20表达 | 第80-81页 |
| ·Transwell趋化实验 | 第81页 |
| ·统计学方法 | 第81页 |
| ·结果 | 第81-86页 |
| ·Th17细胞在食管癌患者中的分布 | 第81-82页 |
| ·RT-qPCR检测结果 | 第82页 |
| ·食管癌患者外周血中Th17细胞水平与临床指标的关系 | 第82-83页 |
| ·食管癌患者外周血、肿瘤组织及癌旁组织Th17表面CCR6的表达水平 | 第83-84页 |
| ·肿瘤组织及癌旁组织CCL20表达水平 | 第84-85页 |
| ·食管癌患者体内Th17与CCL20相关性分析 | 第85页 |
| ·CCL20对食管癌肿瘤组织Th17的趋化作用 | 第85-86页 |
| ·讨论 | 第86-89页 |
| 第六章 食管癌患者体内Treg/Th17细胞表达及其平衡关系的研究 | 第89-108页 |
| 前言 | 第89页 |
| ·材料和方法 | 第89-97页 |
| ·材料 | 第89-92页 |
| ·标本来源 | 第89-91页 |
| ·主要试剂与仪器 | 第91-92页 |
| ·实验方法 | 第92-97页 |
| ·主要溶液及配制方法 | 第92页 |
| ·标本采集 | 第92页 |
| ·细胞分离 | 第92-94页 |
| ·Th17细胞检测 | 第94页 |
| ·Treg细胞检测 | 第94-95页 |
| ·流式细胞仪测定 | 第95页 |
| ·实时荧光定量聚合酶链反应(real-t ime PCR) | 第95-97页 |
| ·统计分析 | 第97页 |
| ·结果 | 第97-105页 |
| ·食管鳞癌患者外周血中Treg细胞、Th17细胞表达及Treg/Th17比值变化 | 第97-98页 |
| ·食管鳞癌患者外周血.中Treg/Th17比值与临床及病理特征的关系 | 第98-101页 |
| ·进展期食管鳞癌患者外周血、癌旁组织、癌组织中Treg/Th17比值变化 | 第101-102页 |
| ·QRT-PCR检测进展期食管鳞癌患者外周血、癌旁组织、癌组织中转录因子Foxp3、ROR γ t mRNA表达水平及Foxp3/ROR γ t的比值变化分析 | 第102-104页 |
| ·进展期食管鳞癌患者癌组织中Foxp3,/ROR γ t比值与Treg.Th17比值的相关性分析 | 第104-105页 |
| ·讨论 | 第105-108页 |
| 第七章 结论与展望 | 第108-110页 |
| ·结论 | 第108页 |
| ·展望 | 第108-110页 |
| 参考文献 | 第110-123页 |
| 附录 | 第123-126页 |
| 致谢 | 第126-127页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第127页 |
