| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-34页 |
| ·植物多糖的研究进展 | 第12-22页 |
| ·植物多糖的分离提取 | 第12-14页 |
| ·植物多糖的分离纯化 | 第14-15页 |
| ·植物多糖的结构测定 | 第15-17页 |
| ·植物多糖的生物活性 | 第17-18页 |
| ·多糖的结构修饰 | 第18-22页 |
| ·米糠多糖研究进展 | 第22-24页 |
| ·立题背景和意义 | 第24-25页 |
| ·本课题的主要研究内容 | 第25-26页 |
| 参考文献 | 第26-34页 |
| 第二章 米糠多糖超声波提取工艺的研究 | 第34-45页 |
| ·前言 | 第34-35页 |
| ·材料与方法 | 第35页 |
| ·仪器和设备 | 第35页 |
| ·主要材料和试剂 | 第35页 |
| ·实验方法 | 第35-37页 |
| ·超声波提取米糠多糖的提取工艺 | 第35-36页 |
| ·响应面(RSM)优化超声波提取米糠粗多糖 | 第36页 |
| ·RBF-QPSO 算法优化米糠多糖过程 | 第36页 |
| ·多糖含量的测定 | 第36-37页 |
| ·米糠粗多糖的得率的计算 | 第37页 |
| ·结果与讨论 | 第37-42页 |
| ·响应曲面法实验设计与试验结果 | 第37页 |
| ·试验统计模型的建立 | 第37-39页 |
| ·回归模型检验 | 第39-40页 |
| ·回归方程的优化 | 第40-41页 |
| ·RBF-QPSO 算法优化米糠多糖过程 | 第41-42页 |
| ·本章小结 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-45页 |
| 第三章 米糠多糖RBPS2a 的分离纯化及结构鉴定 | 第45-65页 |
| ·前言 | 第45页 |
| ·材料与方法 | 第45-48页 |
| ·仪器和设备 | 第45-46页 |
| ·主要材料和试剂 | 第46页 |
| ·分析方法 | 第46-47页 |
| ·数据分析 | 第47页 |
| ·多糖分子量的测定和纯度鉴定(HPGPC) | 第47页 |
| ·样品中多糖含量、糖醛酸含量及单糖组成分析 | 第47页 |
| ·样品中蛋白含量及氨基酸组成分析 | 第47页 |
| ·RBPS2a 部分酸水解 | 第47-48页 |
| ·RBPS2a 高碘酸氧化及Smith 降解 | 第48页 |
| ·RBPS2a 甲基化 | 第48页 |
| ·红外光谱及核磁共振测定 | 第48页 |
| ·结果与讨论 | 第48-62页 |
| ·米糠体外抗肿瘤多糖分离纯化以及活性组分的筛选 | 第48-51页 |
| ·米糠多糖组分RBPS2a 的理化性质及其结构表征 | 第51-62页 |
| ·本章小结 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-65页 |
| 第四章 硫酸酯化米糠多糖的制备、活性及其结构分析 | 第65-77页 |
| ·前言 | 第65-66页 |
| ·材料与设备 | 第66页 |
| ·主要仪器和设备 | 第66页 |
| ·主要试剂 | 第66页 |
| ·实验方法 | 第66-68页 |
| ·米糠多糖RBPS2a 的制备 | 第66页 |
| ·米糠多糖的硫酸酯化方法 | 第66页 |
| ·酯化试剂的比例对制备硫酸酯化米糠多糖的影响 | 第66页 |
| ·不同温度对制备硫酸酯化米糠多糖的影响 | 第66-67页 |
| ·不同反应时间对制备硫酸酯化米糠多糖的影响 | 第67页 |
| ·米糠多糖硫酸酯化的正交试验 | 第67页 |
| ·硫酸基含量的测定 | 第67页 |
| ·硫酸酯化米糠多糖各组分体外对肿瘤细胞增殖抑制作用 | 第67页 |
| ·分子量的测定和纯度鉴定(HPGPC) | 第67-68页 |
| ·红外光谱和~(13)C NMR 分析 | 第68页 |
| ·结果与讨论 | 第68-74页 |
| ·硫酸酯化修饰米糠多糖的单因素试验结果 | 第68-69页 |
| ·硫酸酯化米糠多糖正交试验结果 | 第69-70页 |
| ·硫酸酯化米糠多糖各组分体外对肿瘤细胞增殖抑制作用 | 第70-71页 |
| ·硫酸酯化米糠多糖SRBPS2a 的分子量测定 | 第71-72页 |
| ·硫酸酯化米糠多糖的红外光谱 | 第72-73页 |
| ·硫酸酯化米糠多糖的核磁共振分析 | 第73页 |
| ·硫酸酯化米糠多糖的构效关系探讨 | 第73-74页 |
| ·本章小结 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-77页 |
| 第五章 硫酸酯化米糠多糖SRBPS2a 体内抗肿瘤作用及机理的初步研究 | 第77-87页 |
| ·前言 | 第77页 |
| ·材料与设备 | 第77-78页 |
| ·主要材料 | 第77页 |
| ·主要试剂 | 第77-78页 |
| ·主要仪器和设备 | 第78页 |
| ·实验方法 | 第78-79页 |
| ·动物模型建立 | 第78页 |
| ·给样方式 | 第78页 |
| ·疗效评价 | 第78-79页 |
| ·数据分析 | 第79页 |
| ·结果与讨论 | 第79-85页 |
| ·SRBPS2a 对EMT-6 荷瘤小鼠的抑瘤作用 | 第79-80页 |
| ·白细胞计数 | 第80页 |
| ·对荷瘤小鼠免疫器官重量的影响 | 第80-81页 |
| ·对小鼠EMT-6 肿瘤组织病理形态学的影响 | 第81-82页 |
| ·对小鼠EMT-6 肿瘤组织中Bax 和Bcl-2 基因蛋白表达的影响 | 第82-85页 |
| ·本章小结 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-87页 |
| 第六章 硫酸酯化米糠多糖SRBPS2a 诱导肿瘤细胞凋亡及相关机制研究 | 第87-102页 |
| ·前言 | 第87-88页 |
| ·材料与设备 | 第88页 |
| ·主要材料 | 第88页 |
| ·主要试剂 | 第88页 |
| ·主要仪器和设备 | 第88页 |
| ·实验方法 | 第88-90页 |
| ·样品对不同细胞的生长状况影响（光学显微镜） | 第88页 |
| ·扫描电镜观察样品对不同细胞的形态影响 | 第88-89页 |
| ·荧光显微镜观察凋亡细胞核变化 | 第89页 |
| ·流式细胞术分析样品对HepG-2 细胞周期的影响 | 第89页 |
| ·流式细胞仪检测线粒体膜电位 | 第89页 |
| ·流式细胞仪检测肿瘤基因蛋白和Caspase-3 的表达水平 | 第89-90页 |
| ·结果与讨论 | 第90-100页 |
| ·SRBPS2a 对肿瘤细胞HepG-2 形态影响 | 第90-91页 |
| ·扫描电镜下观察SRBPS2a 诱导HepG-2 细胞凋亡的形态学变化 | 第91-92页 |
| ·荧光显微镜观察SRBPS2a 对HepG-2 凋亡细胞核变化 | 第92-93页 |
| ·SRBPS2a 对HepG-2 细胞周期的影响 | 第93-94页 |
| ·双染色法检测SRBPS2a 对HepG-2 细胞线粒体跨膜电位(?Ψm)的影响 | 第94-97页 |
| ·流式细胞仪检测SRBPS2a 作用肿瘤相关基因蛋白和Caspase-3 的表达水平 | 第97-100页 |
| 参考文献 | 第100-102页 |
| 论文主要结论 | 第102-104页 |
| 本论文创新点 | 第104-105页 |
| 攻读博士学位期间发表论文清单 | 第105-106页 |
| 致谢 | 第106页 |
